一、丙氨酰-谷氨酰胺二肽对烧伤大鼠血清谷胱甘肽浓度及抗氧化作用的影响（论文文献综述）
魏睿元[1]（2020）在《内蒙古马匹耐力运动训练代谢组学的研究》文中指出马匹耐力赛是历史悠久的人和动物合作的运动娱乐项目,蒙古马是我国本土特有马种之一,经历了漫长的岁月,在草原上以半饲牧半野放方式选育,因此蒙古马具有优良的抗受力和耐力。本文对6匹蒙古马、6匹杂交马进行了两个月,各单次15km和30km负荷耐力运动训练后的代谢组进行了研究,分别在训练前后和休息45min三个时间点采集血液样本,在训练前后采集肌肉样本,利用1H-NMR技术对血浆、肌肉样本代谢物进行检测,使用Chenomx NMR suit软件数据库对代谢物进行归属分类,通过PLS-DA和一维方差对代谢模式和显着变化的差异代谢物分析筛选,再进行功能富集和KEGG Pathway分析,找到训练前后发生显着变化的代谢通路及相关代谢物,得到训练前后差异代谢物的互作网络关系图,分析耐力运动期间及休息恢复中机体的物质、能量代谢方式以及潜在的代谢异常风险。经过实验分析本文得到的主要研究结果如下:1.研究蒙古马耐力运动中的代谢调控及分子机制。观察运动前后血浆、肌肉中代谢物的变化。结果显示,15km耐力负荷,运动期间蒙古马更偏向于无氧代谢的方式为机体供能,乳酸能和糖代谢更活跃,运动后机体脂肪供能增加。30km耐力负荷,运动期间蒙古马更偏向于脂肪有氧代谢的方式供能,但糖异生的过程也加强,与脂肪酸代谢相关的物质,如肉碱、泛酸、甜菜碱的消耗都显着增加,运动后机体的免疫压力明显增加。提示,脂肪储备,乳酸的生成和清除对于蒙古马耐力运动具有重要的意义。2.研究杂交马耐力运动中的代谢调控及分子机制。观察运动前后血浆、肌肉中代谢物的变化。结果显示,15km耐力负荷,运动期间杂交马更偏向于无氧代谢的方式为机体供能,乳酸能和糖代谢更活跃,运动后糖酵解依然持续供能。30km耐力负荷,运动期间杂交马更偏向于糖酵解和脂肪有氧代谢混合的方式为机体供能,运动后机体的免疫压力明显增加。两次耐力负荷期间糖酵解途径均比较活跃,且运动后杂交马机体表现出迅速的清除乳酸的能力。提示,乳酸的生成和清除对于杂交马耐力运动具有重要的意义。3.比较蒙古马与杂交马耐力运动中的代谢差异。观察运动前后血浆、肌肉中代谢物的变化。结果显示,运动前杂交马糖代谢表现的更活跃,而蒙古马组脂肪酸的代谢供能的占比更多。运动中蒙古马脂肪动员的能力更显着,对于耐力运动来说具有更大的优势,爆发力也更有潜质,但是杂交马表现出更好的乳酸耐受和代谢能力,对于短距离的比赛或许更有优势。提示,以蒙古马为基础培育耐力赛马是可行的。4.代谢通路和病症富集的分析。结果显示,15km负荷期间差异代谢物显着关联代谢通路,蒙古马组血浆样本18条、肌肉样本6条,杂交马组血浆样本5条、肌肉样本15条。30km负荷期间差异代谢物显着关联代谢通路,蒙古马组血浆样本9条、肌肉样本19条,杂交马血浆样本7条、肌肉样本13条。其中主要涉及糖酵解或糖异生、酮体的合成与降解、柠檬酸盐循环、缬氨酸,亮氨酸和异亮氨酸的降解、缬氨酸,亮氨酸和异亮氨酸的生物合成、牛磺酸和牛磺酸的代谢、甲烷代谢、D-谷氨酰胺和D-谷氨酸代谢等途径。运动后两组马都有发生机体物质代谢异常、机体氧化应激、各种不适症、炎症性疾病、肌肉溶解、神经紊乱症、线粒体-脑病-乳酸-中风、厌氧症、心脏衰竭、心肌梗塞、心肌损伤、窒息、严重惊厥或心源性休克、肾上腺皮质功能减退症等病症的可能,提示,运动后物质补充和机体调整是必要的。
李雪,张木子,黎明,章倩,王日昕,姜海波[2]（2019）在《饲料中添加丙氨酰-谷氨酰胺二肽对黄颡鱼幼鱼生长性能、抗氧化能力、免疫应答能力及抗逆能力的影响》文中提出本试验旨在研究饲料中添加丙氨酰-谷氨酰胺二肽（AGD）对黄颡鱼幼鱼生长性能、抗氧化能力、免疫应答能力及抗逆能力的影响。以平均体重为（1.98±0.01） g的黄颡鱼幼鱼为研究对象,随机分成5组,每组3个重复,每个重复30尾鱼,分别投喂添加0 （对照）、0. 25%、0.50%、0.75%和1. 00%AGD的5种试验饲料,5种试验饲料中AGD含量的实测值依次为0.08%、0.23%、0.56%、0.69%和1.09%。摄食生长试验持续56 d。结果表明:随着饲料中AGD添加量的增加,试验鱼的增重、特定生长率以及血清总蛋白、白蛋白、球蛋白、补体3和补体4含量与超氧化物歧化酶、过氧化氢酶、谷胱甘肽、溶菌酶、碱性磷酸酶和酸性磷酸酶活性均先增加后降低,0.50%和0.75%AGD组均显着高于对照组（P<0.05）。饲料中添加不同水平的AGD均显着提高了试验鱼血清总抗氧化能力（P<0.05）,显着降低了丙二醛含量（P<0.05）。氨氮胁迫96 h后,对照组试验鱼大脑中氨和谷氨酰胺含量显着高于各AGD添加组（P<0.05）,同时累积死亡率也显着高于各AGD添加组（P<0.05）。由此可见,饲料中添加适宜水平的AGD能够提高黄颡鱼幼鱼的生长性能、抗氧化能力、免疫应答能力及抗逆能力;基于特定生长率的二次回归模型拟合,获得黄颡鱼幼鱼饲料中AGD的最适添加量为0.56%;综合考虑生长性能、抗氧化能力、免疫应答能力及抗逆能力,推荐黄颡鱼幼鱼饲料中AGD的添加量为0.50%～0.75%。
辛向荣,贺琴,游金明,叶亚玲,邓宸玺[3]（2018）在《丙氨酰-谷氨酰胺预处理对氧化应激猪小肠上皮细胞活力和自噬的影响》文中认为试验旨在研究预添加丙氨酰-谷氨酰胺（Ala-Gln）对过氧化氢诱导下的小肠上皮细胞IPEC-1的影响。采用单因子试验设计,向IPEC-1细胞培养基中分别添加0、0.25、0.50、1.00、2.00、4.00 mmol/L Ala-Gln,预处理20 h,然后利用400μmol/L H2O2诱导细胞4 h,创建氧化应激模型。试验共设6个处理,每个处理8个重复。结果表明:IPEC-1细胞活力随Ala-Gln预处理水平的提高而提高（P<0.05）;且在Ala-Gln预处理水平为2.00 mmol/L时细胞活力达最大值,4.0 mmol/L水平下反而使细胞活力下降（P<0.05）,但仍高于0.50、1.00 mmol/L Ala-Gln水平下IPEC-1细胞活力;添加Ala-Gln提高了氧化应激状态IPEC-1谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）和超氧化物歧化酶（SOD）活性（P<0.05）,降低了丙二醛（MDA）含量（P<0.05）;细胞SOD活性呈曲线变化,在Ala-Gln预处理水平为0.25、0.50 mmol/L时活性较高,之后随Ala-Gln预处理水平提高而降低（P<0.05）;在Ala-Gln预处理水平为1.00 mmol/L时,MDA含量趋于稳定;添加Ala-Gln后,随Ala-Gln水平细胞质中阳性荧光信号不断增强,且在Ala-Gln为1.00、2.00 mmol/L预处理水平下较为明显;4.00 mmol/L Ala-Gln水平下IPEC-1同对照组相比密度显着增加,且结构完整度相似,阳性荧光信号无显着差异,但同2.00 mmol/L AlaGln添加水平相比细胞密度和生物膜结构完整度提高,胞内荧光信号有减少趋势。由此可得,预添加Ala-Gln可显着提高氧化应激状态下IPEC-1细胞中GSH-Px、SOD酶活性,显着降低脂质过氧化产物MDA含量,缓解氧化应激;在IPEC-1细胞中预添加Ala-Gln能通过增强细胞自噬用以缓解细胞氧化应激。
辛向荣,叶亚玲,游金明,贺琴,邓宸玺[4]（2018）在《丙氨酰-谷氨酰胺缓解Diquat诱导的断奶仔猪氧化损伤的影响》文中指出本研究旨在探讨丙氨酰-谷氨酰胺（Ala-Gln）缓解Diquat诱导的断奶仔猪氧化损伤的影响。试验采用双因子设计,选取24头健康状况良好、胎次相近的21日龄断奶仔猪,首先随机分成2个组,每组12个重复,每个重复1头猪,2个组分别饲喂基础饲粮和基础饲粮+0.3%Ala-Gln的试验饲粮。预饲喂7 d后,在前期饲喂基础上,将仔猪分成4个组,每组6个重复,每个重复1头猪,分别为基础饲粮组、基础饲粮+0.3%Ala-Gln组、基础饲粮应激组、基础饲粮+0.3%Ala-Gln应激组。应激组通过腹腔注射8 mg/kg BW Diquat模拟仔猪氧化应激,而未应激组则注射等量的灭菌生理盐水。试验期7 d。结果表明:1)仔猪氧化应激状态下,与基础饲粮应激组相比,饲粮中添加Ala-Gln显着提高了血清谷氨酰胺（Gln）、谷胱甘肽（GSH）含量和谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）、总超氧化物歧化酶（T-SOD）活性以及总抗氧化能力（T-AOC）（P<0.05）。2)仔猪正常生理状态和氧化应激状态下,与相应基础饲粮组和基础饲粮应激组相比,饲粮中添加Ala-Gln显着提高了空肠GSH-Px活性和T-AOC（P<0.05）,显着降低了丙二醛（MDA）含量（P<0.05）;饲粮中添加Ala-Gln显着提高了肝脏GSH-Px活性和T-AOC（P<0.05）,显着降低了MDA含量（P<0.05）。3)仔猪氧化应激状态下,与基础饲粮应激组相比,饲粮中添加Ala-Gln显着提高了肝脏中谷胱甘肽过氧化物酶4（GPx4）mRNA表达量（P<0.05）,显着降低了超氧化物歧化酶1（SOD1）mRNA表达量（P<0.05）。由此可知,仔猪正常生理状态和氧化应激状态下,饲粮中添加Ala-Gln可提高仔猪抗氧化能力,降低MDA含量,从而减缓氧化应激对断奶仔猪机体组织的损伤;且在氧化应激状态下效果更为显着。
平伟强[5]（2017）在《Ala-Gln和MOS对仔猪断奶应激的调节作用》文中研究表明本研究旨在探讨Ala-Gln和MOS对断奶仔猪生产性能、肠道形态结构、肠道屏障功能以及血液生化指标的影响,研究结果将为指导Ala-Gln和MOS在仔猪饲料中的应用提供理论依据。试验一Ala-Gln和MOS对断奶仔猪生产性能以及腹泻率的影响试验选用162头胎次、体重相近（5.5±0.5 kg）的21日龄杜长大断奶仔猪,随机分为9个处理,每个处理3个重复,每个重复6头仔猪。对照组饲喂基础饲粮,其他处理组饲粮为基础饲粮上分别添加0.10%MOS、0.20%MOS、0.15%Ala-Gln、0.10%MOS+0.15%Ala-Gln、0.20%MOS+0.15%Ala-Gln、0.30%Ala-Gln、0.10%MOS+0.30%Ala-Gln、0.20%MOS+0.30%Ala-Gln,试验期28天。观察并记录每一天仔猪数、投料量、剩料量以及腹泻情况,淘汰和死亡仔猪及时称重并做好记录。试验第1天、14天、28天清晨对仔猪进行空腹称重,并记录每个重复相应的饲料消耗量。计算平均日采食量（ADFI）、日增重（ADG）、料重比（F/G）和腹泻率。结果显示:⑴2135日龄,基础饲粮中添加0.20%MOS+0.30%Ala-Gln显着降低断奶应激仔猪料重比（P<0.05）,3549日龄,基础饲粮中添加0.20%MOS+0.30%Ala-Gln显着提高断奶仔猪平均日增重（P<0.05）,降低断奶仔猪料重比（P<0.05）,基础饲粮中添加0.10%MOS+0.15%Ala-Gln、0.20%MOS+0.30%Ala-Gln显着提高断奶仔猪平均日采食量（P<0.05）,⑵MOS和Ala-Gln对断奶仔猪的生产性能无互作效应。⑶3549日龄,基础饲粮中添加0.10%MOS、0.20%MOS+0.15%Ala-Gln、0.20%MOS+0.30%Ala-Gln显着降低断奶仔猪的腹泻率（P<0.05）。综上所述,MOS和Ala-Gln对断奶仔猪的生长性能有促进作用,本试验结果显示基础饲粮中添加0.20%MOS+0.30%Ala-Gln饲喂仔猪效果最佳。试验二Ala-Gln和MOS对断奶仔猪肠道黏膜形态结构以及肠道屏障功能的影响试验选用162头胎次、体重相近（5.5±0.5 kg）的21日龄杜长大断奶仔猪,随机分为9个处理,每个处理3个重复,每个重复6头仔猪。对照组饲喂基础饲粮,其他处理组饲粮为基础饲粮上分别添加0.10%MOS、0.20%MOS、0.15%Ala-Gln、0.10%MOS+0.15%Ala-Gln、0.20%MOS+0.15%Ala-Gln、0.30%Ala-Gln、0.10%MOS+0.30%Ala-Gln、0.20%MOS+0.30%Ala-Gln,试验期28天。于试验第14天、28天从每个重复随机选取1头仔猪屠宰,剪取其空肠、十二指肠、回肠,经HE染色观察其绒毛形态结构,并用透射电镜观察空肠绒毛超微结构,取盲肠内容物测定菌群结构和多样性,取空肠黏膜测定粘膜Occludin蛋白表达。结果显示:⑴2135日龄,基础饲粮中添加0.10%MOS+0.30%Ala-Gln显着提高十二指肠的绒毛高度（P<0.05）,基础饲粮中添加0.10%MOS+0.15%Ala-Gln显着提高空肠绒毛高度以及绒毛高度/隐窝深度（P<0.05）,基础饲粮中添加0.20%MOS+0.30%Ala-Gln显着提高回肠的绒毛高度、降低十二指肠的隐窝深度,提高了十二指肠、回肠的绒毛高度/隐窝深度（P<0.05）。⑵3549日龄,基础饲粮中添加0.10%MOS+0.30%Ala-Gln组显着提高十二指肠绒毛高、降低回肠隐窝深度（P<0.05）,基础饲粮中添加0.20%MOS+0.30%Ala-Gln组显着提高空肠绒毛高度、降低空肠绒毛高度/隐窝深度（P<0.05）,基础饲粮中添加0.10%MOS+0.15%Ala-Gln显着降低空肠隐窝深度（P<0.05）,基础饲粮中添加0.20%MOS+0.15%Ala-Gln组显着提高十二指肠、回肠绒毛高度/隐窝深度（P<0.05）。⑶3549日龄,MOS和Ala-Gln存在互作效应,主要表现为对十二指肠的绒毛高度以及绒毛高度/隐窝深度。⑷各试验组相对对照组仔猪空肠微绒毛较长、整齐、密集,尤其是在饲粮中添加0.10%MOS+0.15%Ala-Gln组,3549日龄,在基础饲粮中添加0.20%MOS+0.30%Ala-Gln,空肠微绒毛较长、整齐、密集。⑸35、49日龄,试验组粘膜Occludin蛋白表达量均显着高于对照组。综上所述,MOS和Ala-Gln对断奶仔猪的肠道绒毛发育有促进作用,可改善空肠微绒毛结构,促进空肠粘膜Occludin蛋白表达,并且MOS和Ala-Gln对肠道绒毛形态结构有互作效应。试验三Ala-Gln和MOS对断奶仔猪血液生化指标的影响试验选用162头胎次、体重相近（5.5±0.5 kg）的21日龄杜长大断奶仔猪,随机分为9个处理,每个处理3个重复,每个重复6头仔猪。对照组饲喂基础饲粮,其他处理组饲粮为基础饲粮上分别添加0.10%MOS、0.20%MOS、0.15%Ala-Gln、0.10%MOS+0.15%Ala-Gln、0.20%MOS+0.15%Ala-Gln、0.30%Ala-Gln、0.10%MOS+0.30%Ala-Gln、0.20%MOS+0.30%Ala-Gln,试验期28天。于试验第14天、28天从每个重复随机选取1头仔猪静脉采血810 ml,经过离心机分离血清检测谷丙转氨酶（ALT）、谷草转氨酶（AST）等活性。结果显示:⑴2135日龄仔猪,基础饲粮中添加0.10%MOS+0.30%Ala-Gln组显着提高断奶仔猪SOD、GSH-PX活力（P<0.05）,基础饲粮中添加0.20%MOS+0.30%Ala-Gln显着提高断奶仔猪血清TP的含量,ALT和AST活性,降低COR含量（P<0.05）,基础饲粮中添加0.10%MOS+0.15%Ala-Gln显着降低断奶仔猪中血清COR含量（P<0.05）。⑵3549日龄,基础饲粮中添加0.20%MOS显着提高血清中AST活性（P<0.05）,基础饲粮中添加0.10%MOS+0.15%Ala-Gln显着降低血清中COR的含量（P<0.05）。
韩奇鹏,掲红东,罗玲,王凯军,周传社,张佩华,孔志伟,汤少勋[6]（2016）在《谷氨酰胺及其二肽对过氧化氢诱导山羊瘤胃上皮细胞凋亡及凋亡相关基因表达的影响》文中进行了进一步梳理本试验通过建立过氧化氢（H2O2）诱导山羊瘤胃上皮传代细胞凋亡模型,研究谷氨酰胺（Gln）、甘氨酰谷氨酰胺（Gly-Gln）和丙氨酰谷氨酰胺（Ala-Gln）对凋亡细胞的凋亡率及Bcl-2、Bax基因表达量的影响。选用60日龄湘东黑山羊的瘤胃上皮传代细胞,采用不同浓度[0（对照组）、100、400、800μmol/L]的H2O2培养细胞,应用流式细胞术检测细胞凋亡情况。传代瘤胃上皮细胞分为5组,对照组和1组分别添加0、800μmol/L H2O2,2组、3组、4组均添加800μmol/L H2O2,同时分别添加17.28 mmol/L Gly-Gln（2组）、16.0 mmol/L Gln（3组）、16.0 mmol/L AlaGln（4组）,应用流式细胞术检测细胞凋亡情况,同时采用实时荧光定量PCR（FQ-PCR）法检测细胞Bcl-2、Bax基因表达量。结果显示:1)与对照组相比,当H2O2浓度增加到800μmol/L时,早期凋亡的凋亡率显着增加（P<0.05）,而晚期凋亡的凋亡率随着H2O2浓度的增加呈现增加后减少的趋势,但相对于对照组,都呈显着增加（P<0.05）。2)与对照组相比,4组晚期凋亡的凋亡率显着增加（P<0.05）,试验组早期凋亡的凋亡率均显着增加（P<0.05）。3)与对照组相比,试验组Bcl-2/Bax均显着增加（P<0.05）;与1组相比,2组、3组和4组Bcl-2/Bax均显着增加（P<0.05）,且2组显着高于3组、4组（P<0.05）。综合得出,Gly-Gln对H2O2引起山羊瘤胃上皮细胞早期凋亡具有一定的保护作用。
张茜[7]（2015）在《不同酸化海水、VE和AGD添加剂对海水青鳉稚鱼RNA/DNA和GPx、PPARα基因表达的影响》文中研究表明在模拟生态系统内,用进口的德国AB盐（高级海水晶）配制适宜海水（水质条件为pH8.1、28℃、盐度30、溶氧量≥6.0mg/dm3）,孵化和养殖海水青鳉（Oryziasmelastigmα）稚鱼。选用大小一致、健康活泼的30d龄稚鱼作对象研究以下内容:1.投喂基础饲料,在不同酸化海水中养殖海水青鳉稚鱼6周,研究不同酸化海水对稚鱼的影响;2.投喂添加不同剂量维生素E（VE）和丙氨酰-谷氨酰胺（AGD）的饲料,在pH7.7酸化条件下养殖稚鱼6周,研究添加剂调控鱼类的效果。结果如下:1.在本实验条件下,不同酸化海水养殖海水青鳉稚鱼6周,均显着降低稚鱼RNA/DNA值,显着提高稚鱼GPx、PPARα基因的相对表达量。例如pH8.1 对照组（G0）稚鱼的 RNA/DNA 值为 1.86±0.01,GPx、PPARα 的 2-ΔΔCt值分别是 1.18±0.02,1.03±0.03;而 pH7.3组（G4）鱼的 RNA/DNA 值为1.36±0.01,GPx、PPARα 的2-ΔΔCt值分别是 1.71±0.05,1.52±0.04。2.在本实验条件下,添加不同剂量AGD和VE调控于pH7.7养殖的海水青鳉稚鱼6周,能显着提高RNA/DNA和GPx、PPARα基因的相对表达量。例如对照组（G0,pH7.7,无AGD和VE添加剂）鱼的RNA/DNA为1.65±0.01,GPx、PPARα 的2-△ΔCt值分别为 1.60±0.01,1.43±0.04;而实验组G3（pH7.7,每kg干饲料添加AGD 5.0 g和VE 50IU）鱼的RNA/DNA为 1.84±0.02,GPx、PPARα 的2-ΔΔCt值分别为 2.66±0.03,1.91 ±0.01。因此得出结论:酸化海水显着降低鱼类的RNA/DNA值,刺激其GPx、PPAR α基因表达;添加不同剂量的AGD和VE调控酸化海水中的鱼类,可显着提高其RNA/DNA和GPx、PPARα基因的相对表达量,其中在本实验条件下,每kg干饲料添加AGD 5.0 g和VE 50 IU是最佳调控剂量。
刘庄鹏[8]（2015）在《谷氨酰胺、谷氨酰胺二肽对草鱼幼鱼生长及生理生化指标的影响》文中进行了进一步梳理本试验以草鱼幼鱼（Ctenopharyngodon idellus）为试验对象,以商业配方为基础,配置基础饲料,在草鱼基础饲料中添加不同浓度的谷氨酰胺和谷氨酰胺二肽,研究不同浓度的谷氨酰胺和谷氨酰胺二肽对草鱼生长、血液生化指标及肠道形态的影响。试验分两部分组成,结果如下：试验一：选取平均体重为（7.16±0.1g）的草鱼750尾为试验对象,在草鱼基础饲料中分别添加浓度为0.00%、0.30%、0.60%、0.90%、1.20%的谷氨酰胺。研究不同浓度的谷氨酰胺对草鱼生长、血液生化指标及肠道形态的影响。试验在车田江水库养殖网箱（1.5×1.5×1.5）中进行,将试验鱼随机分为5个处理组,每组3个重复,每箱50尾鱼,试验持续8周。结果表明：在生长方面,谷氨酰胺能显着提高草鱼幼鱼终末体重、增重率和特定生长率,并随其浓度的增加而升高,但过量添加（1.20%）时,均表现出下降的趋势,但差异不显着（P>0.05）；饵料系数随着谷氨酰胺添加量的增加,呈现先下降后上升的趋势（P<0.05）。谷氨酰胺对草鱼幼鱼肥满度、肝体比、脏体比无显着性差异（P>0.05）,但显着影响了草鱼幼鱼肠道消化酶活力（P<0.05）,其中脂肪酶和胰蛋白酶活力随着谷氨酰胺添加量的增加而提高,但添加量为1.20%时均表现出下降趋势（P>0.05）,当添加0.30%谷氨酰胺时其肠道淀粉酶活力显着降低,并达到最低值（P<0.05）。外源性添加不同浓度的谷氨酰胺显着影响着全鱼粗脂肪和粗灰分含量（P<0.05）,当添加量为0.90%及以上时,全鱼灰分含量显着高于其余试验各组（P<0.05）。在血液指标方面,谷氨酰胺显着提高草鱼幼鱼血清中血糖（GLU）含量,降低了总胆固醇（CHO）和甘油三酯含量（TG）（P<0.05）,当添加0.30%的谷氨酰胺时,血清中尿素氮（BUN）的含量（P<0.05）显着提高；谷氨酰胺的添加均可导致血清中谷草转氨酶（GOT）和谷丙转氨酶（GPT）活力的升高（P<0.05）；随着谷氨酰胺添加量的增加,草鱼血清中谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-P X）活力、丙二醛（MDA）含量不断提高,但显着降低了草鱼超氧化物歧化酶（SOD）活力、溶菌酶、补体C3、C4活力（P<0.05）,当谷氨酰胺添加超过0.60%时,血清中分泌型球蛋白（S-LgA）含量显着低于其余各组（P<0.05）。在肠道形态方面,谷氨酰胺显着影响着前肠黏膜厚度、杯状细胞数、淋巴细胞数。前肠黏膜厚度随着谷氨酰胺添加量的不断增加而不断增厚（P<0.05）,适量的谷氨酰胺能增加草鱼前肠杯状细胞数和淋巴细胞数,但过量添加会导致其数量显着下降（P<0.05）；谷氨酰胺显着影响着草鱼幼鱼中肠绒毛高度、黏膜厚度和淋巴细胞数（P<0.05）。其绒毛高度和黏膜厚度随着谷氨酰胺添加量的不断增加而升高（P<0.05）,同样,过量添加会降低其影响（P<0.05）。综上所述,谷氨酰胺在草鱼幼鱼的日粮中最适添加量为0.60%。试验二：选取平均体重为（7.16±0.1g）的草鱼750尾为试验对象,在草鱼基础饲料中分别添加浓度为0.00%、0.25%、0.50%、0.75%、1.00%的谷氨酰胺二肽（甘氨酰-谷氨酰胺Gly-Glu）,研究不同浓度的谷氨酰胺二肽对草鱼幼鱼生长、血液生化指标及肠道形态的影响。试验在车田江水库养殖网箱（1.5*1.5*1.5）中进行,将试验鱼随机分为5个处理组,每组3个重复,每箱50尾鱼,试验持续8周。结果表明：在生长方面,适量（0.25%）的添加谷氨酰胺二肽对草鱼幼鱼的终末体重、增重率、特定生长率均有提高作用,随着谷氨酰胺二肽浓度的增加,饵料系数显着降低（P<0.05）；谷氨酰胺二肽显着增加了草鱼幼鱼脏体比（P<0.05）,当添加量为0.75%时,其肝体比值最低（P<0.05）,对草鱼肥满度呈先上升后下降的趋势（P<0.05）；谷氨酰胺二肽显着影响着草鱼幼鱼肠道消化酶活力（P<0.05）。脂肪酶和胰蛋白酶活力随着谷氨酰胺二肽添加量的增加均呈先上升后下降的趋势（P<0.05）,当添加量为0.25%时,其活力均为达到最大值。谷氨酰胺二肽显着降低了淀粉酶活力（P<0.05）,当添加量为1.00%时,淀粉酶活力有所上升,但始终显着低于对照组（P<0.05）；外源性添加不同浓度的谷氨酰胺二肽显着影响了全鱼粗蛋白和水分含量（P<0.05）。当添加量为0.50%、0.25%时,其全鱼水分和粗蛋白分别达到最小值（P<0.05）。在血液指标方面,当添加量为0.75%时,血清中血糖（GLU）含量显着高于其余各组（P<0.05）,随着谷氨酰胺二肽添加量的增加对血清总蛋白（TP）的影响呈先上升后下降的的趋势（P<0.05）,谷氨酰胺二肽显着提高了血清中尿素氮（BUN）和甘油三酯（TG）含量（P<0.05）,对总胆固醇（CHO）呈先下降后上升的趋势（P<0.05）,当添加量为0.50%时,其含量最低；随谷氨酰胺二肽添加量的增加,血清中GOT呈先上升后下降的趋势（P<0.05）,当添加量为0.50%时血清中GPT活力最低（P<0.05）；当添加量为0.25%时,谷氨酰胺二肽能显着提高草鱼幼鱼血清中谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-PX）活力、总抗氧化能力（T-AOC）（P<0.05）,但显着降低了超氧化物歧化酶（SOD）和过氧化氢酶（CAT）活力（P<0.05）；当添加量为0.50%时,草鱼幼鱼血清中溶菌酶（LZM）活力达到最高值（P<0.05）,谷氨酰胺二肽显着降低了血清中补体C4活力（P<0.05）,提高了皮质醇含量（P<0.05）。在肠道形态方面,谷氨酰胺二肽显着影响着草鱼幼鱼前肠杯状细胞数、淋巴细胞数。随着谷氨酰胺二肽添加量的增加,草鱼前肠杯状细胞数随添加量的增加而显着降低（P<0.05）,当添加量为0.75%时其数量达到最低值,但其淋巴细胞数随谷氨酰胺二肽添加量的增加而显着增多（P<0.05）；谷氨酰胺二肽对草鱼幼鱼中肠绒毛高度无显着性差异（P>0.05）,但显着影响着中肠隐凹深度、黏膜厚度、杯状细胞数和淋巴细胞数（P<0.05）。随着谷氨酰胺二肽的添加,草鱼幼鱼中肠隐凹深度和淋巴细胞数呈先下降后上升的趋势（P<0.05）,当添加0.50%时均达到最小值。黏膜厚度随着谷氨酰胺二肽添加量的增加而增厚,适量的添加能显着提高草鱼幼鱼中肠杯状细胞数（P<0.05）。综上所述,谷氨酰胺二肽在草鱼幼鱼的日粮中最适添加量为0.25%。
贺光祖[9]（2015）在《谷氨酰胺二肽对猪肠上皮细胞更新和蛋白质代谢的调控研究》文中认为本论文旨在探讨谷氨酰胺二肽调控猪肠上皮细胞更新和蛋白质代谢的作用机制,为谷氨酰胺二肽在仔猪营养中的应用提供理论依据,同时为人类肠道营养提供参考。主要通过体外培养猪肠上皮细胞（IPEC-J2）,用等剂量浓度（2.5mM）的Ala-Gln和Gly-Gln替代DMEM-F12培养基中的Gln,采用Edu掺入法、流式细胞分析、同位素示踪、RT-PCR、Western Blot等方法和技术研究谷氨酰胺二肽对细胞增殖、小肽转运载体表达、蛋白质周转及相关信号通路的调控作用。结果表明：体外培养的肠上皮细胞中,与Gln相比,Ala-Gln对细胞增殖和周期均无显着影响,Gly-Gln抑制了细胞增殖；Ala-Gin促进了小肽转运载体PepTl基因表达水平,但对其转录因子Sp1无显着影响；Ala-Gln处理组细胞蛋白质周转与Gln处理组差异不显着,但Gly-Gln显着抑制蛋白质合成而促进蛋白质降解; Ala-Gln组细胞mTOR磷酸化水平、4EBP1磷酸化水平和S6K1蛋白质表达水平比Gln处理组细胞均显着升高, Gly-Gln处理组肠上皮细胞mTOR、磷酸化mTOR和S6K1蛋白质水平显着低于其他处理组细胞; Ala-Gln处理组细胞UBE3B mRNA的表达量显着高于Gln组,而Gly-Gln处理组细胞UBE3B mRNA的表达水平与Gin处理组差异不显着。以上结果提示,在体外培养的肠上皮细胞中,Ala-Gln可以替代Gln,发挥促进细胞增殖和蛋白质合成的作用。
辛向荣[10]（2014）在《Ala-Gln对断奶仔猪氧化应激的调节作用及其机制初步研究》文中研究说明本项研究将通过应用现代营养学、病理学、氧化应激模型、细胞系模型、实时荧光定量PCR（RT-PCR）、免疫荧光等技术，进行体内与体外试验，同时结合现今临床医学研究进展，从细胞与分子水平探讨Ala-Gln对断奶仔猪机体内抗氧化能力的影响，掌握Ala-Gln与仔猪肠上皮细胞自噬关系，进而为初步揭示Ala-Gln对断奶仔猪氧化应激调节作用机理和研究新思路提供理论依据。试验一Ala-Gln对氧化应激仔猪机体抗氧化能力的影响试验选取24头健康状况良好、胎次相近、（21±2）日龄断奶仔猪，按照体重相近原则随机分成2个组，每组12个重复，每个重复1头猪。分别饲喂基础日粮、基础日粮＋0.3%Ala-Gln的试验日粮。饲喂7天后，再将每个日粮处理组仔猪按照体重相近原则随机分成两个组即应激组和非应激组，应激组腹腔注射8mg/kg（BW）Diquat，非应激组注射等量的灭菌生理盐水。应激后继续饲养7天，试验期共14d。试验第14d早上仔猪前腔静脉采血，分离血清，并屠宰所有重复组断奶仔猪，采集空肠、肝脏、脾脏样品。试验结果表明：（1）在氧化应激状态下，断奶仔猪日粮中添加添加0.30%Ala-Gln提高了血清中Gln和GSH含量和T-AOC（P<0.01），增强了GSH-Px和T-SOD活力（P<0.01）。（2）Ala-Gln增加了714d空肠组织中GSH-Px和T-SOD活力和T-AOC（P<0.01），降低了MDA含量（P<0.01）。（3）Ala-Gln增强了714d肝脏组织中GSH-Px（P<0.01）、T-SOD（P<0.05）活力和T-AOC（P<0.01），降低了MDA含量（P<0.01）。（4）日粮中添加Ala-Gln使714d空肠绒毛高度提高（P<0.01），隐窝深度降低（P<0.05），空肠绒毛高度与隐窝深度的比值提高（P<0.05）。（5）通过对组织切片镜检发现，Ala-Gln能够通过提高抗氧化物酶活，改善氧化应激对空肠、肝脏和脾脏的损伤。（6）0.30%Ala-Gln使肝脏中GPx4mRNA表达量提高了166.7%（P<0.01），SOD1mRNA表达量降低了40.0%（P<0.01）。综上研究得出，Ala-Gln可以通过提高机体组织中Gln和GSH含量，增强抗氧化物酶GSH-Px、SOD活力及其相应表达水平，提高组织总抗氧化能力，降低过氧化产物MDA含量，减缓氧化应激对断奶仔猪机体组织的损伤。试验二Ala-Gln对氧化应激状态下仔猪淋巴细胞抗氧化作用试验采用单因子试验设计，分离培养仔猪外周血淋巴细胞，向细胞培养基中添加6个Ala-Gln水平（0、0.25、0.5、1.0、2.0、4.0mM），之后加入终浓度为400μM H2O2诱导氧化应激，试验共设6个处理，每个处理至少8个重复。结果表明：（1）氧化应激条件下，添加Ala-Gln能够提高淋巴细胞GSH-Px和T-SOD活力（P<0.01），其中2.0mM添加水平时， T-SOD有最高活力水平，同时MDA含量下降（P<0.01）。（2）淋巴细胞转化率随Ala-Gln添加水平的提高而提高（P<0.01），并且在2.0水平达到最高值。培养液中IL-2、IL-4含量也相应提高（P<0.01），同时IFN-γ和TNF-α含量降低（P<0.01），其中IL-2在2.0mM水平有最高值，IL-4在1.0、2.0mM处有最高值，IFN-γ在1.0mM水平出现最低值，其后含量水平稳定，而TNF-α随Ala-Gln添加水平增加而提高（P<0.01）。综上所述，Ala-Gln能够提高氧化应激状态淋巴细胞转化率，同时提高外周血淋巴细胞中抗氧化物酶GSH-Px、SOD活力，增强抗氧化能力，降低MDA产生，促进细胞因子分泌，减缓氧化应激对外周淋巴系统的损伤，提高免疫力。试验三H2O2对猪小肠上皮细胞氧化应激的诱导作用采用单因子试验设计，试验共7个处理，即在离体培养的猪小肠上皮细胞（Intestinal Porcine Epithelial Cells，IPEC-1）中分别加入终浓度0、50、100、200、400、800、1600μM的H2O2，每个处理6个重复。结果表明：（1）当H2O2浓度为400μM时，细胞活力仅为对照组的49.2%（P<0.05），并且当H2O2的浓度提高为800、1600μM时，细胞活力与400μM无显着差异（P>0.05）。（2）添加H2O2诱导氧化应激降低了IPEC-1GSH-Px和SOD活性（P<0.01），提高了MDA含量（P<0.01），其中400μM H2O2水平与800、1600μM水平IPEC-1中抗氧化酶活力无显着差异（P>0.05）。通过本试验得出H2O2能通过降低IPEC-1活力和抗氧化酶活性，提高MDA含量，诱导氧化应激。400μM的H2O2可对IPCE-1产生明显的氧化应激效应，为最佳氧化应激模型添加量。试验四Ala-Gln对氧化应激状态下猪小肠上皮细胞保护作用试验采用单因子试验设计，向IPEC-1细胞培养基中添加6个Ala-Gln水平（0、0.25、0.5、1.0、2.0、4.0mM），利用试验三确定最佳H202诱导浓度，构建氧化应激模型，试验共设6个处理，每个处理至少8个重复。研究H2O2诱导氧化应激状态下，不同浓度的Ala-Gln对IPEC-1的保护作用。结果表明：（1）IPEC-1细胞活力随Ala-Gln添加水平的提高而提高（P<0.01）；其中0.5mM添加水平使氧化应激下细胞活力恢复正常，且在2.0mM水平达到最大值，4.0mM水平反而使细胞活力下降（P<0.05），但仍高于0.5、1.0mM水平下IPEC-1细胞活力。（2）添加Ala-Gln提高了氧化应激状态IPCE-1GSH-Px和SOD活性（P<0.01），降低了MDA含量（P<0.01）；GSH-Px活力随Ala-Gln添加水平提高而提高（P<0.01）；SOD在0.25和0.5mM水平下活性最高，之后随Ala-Gln添加水平提高而降低（P<0.01）；MDA含量随Ala-Gln添加水平提高而降低（P<0.01），且在Ala-Gln1.0mM添加水平时，MDA含量趋于稳定。（3）氧化应激状态下IPEC-1细胞密度短时间降低，且细胞膜和核膜严重破损，细胞质加速外渗，细胞核几乎消融，且胞内阳性荧光信号极少出现；添加Ala-Gln后，随Ala-Gln水平提高IPEC-1生物膜结构趋于完整，细胞密度提高，其细胞质中阳性荧光信号不断增强，且在1.0mM和2.0mM水平越发明显；4.0mMAla-Gln添加水平（F组）IPEC-1同对照组相比密度显着增加，且结构完整度相似，阳性荧光信号无显着差异，但同2.0mM Ala-Gln添加水平（E组）相比细胞密度和生物膜结构完整度提高，胞内荧光信号显着减少。本试验研究发现，预添加Ala-Gln可显着提高氧化应激状态下IPEC-1细胞中GSH-Px、SOD酶活性，显着降低脂质过氧化产物MDA含量，显着增强细胞自噬，表明Ala-Gln对猪小肠上皮细胞具有较强的抗氧化和细胞防御作用。
二、丙氨酰-谷氨酰胺二肽对烧伤大鼠血清谷胱甘肽浓度及抗氧化作用的影响（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、丙氨酰-谷氨酰胺二肽对烧伤大鼠血清谷胱甘肽浓度及抗氧化作用的影响（论文提纲范文）
（1）内蒙古马匹耐力运动训练代谢组学的研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 缩略语表 |
| 1 绪论 |
| 1.1 马术耐力赛概述 |
| 1.1.1 国际马术联合会(FEI)简述 |
| 1.1.2 耐力赛(Endurance)简述 |
| 1.1.3 国内外耐力赛展况 |
| 1.2 耐力赛用马 |
| 1.2.1 国外的马术耐力赛马品种 |
| 1.2.2 国内的马术耐力赛马品种 |
| 1.3 代谢组学应用 |
| 1.3.1 代谢组学概述 |
| 1.3.2 运动代谢组学的研究应用 |
| 1.3.3 马运动代谢组学研究进展 |
| 1.4 马运动相关基因研究进展 |
| 1.5 研究的目的意义及技术路线 |
| 1.5.1 本研究的目的及意义 |
| 1.5.2 本研究的技术路线 |
| 2 研究一 蒙古马耐力运动训练代谢组学比较分析研究 |
| 2.1 材料与方法 |
| 2.1.1 试验动物 |
| 2.1.2 试验运动训练原理 |
| 2.1.3 试验地区概况 |
| 2.1.4 试验器材及测试场地状况 |
| 2.1.5 试验基础数据及样本采集 |
| 2.1.6 核磁检测血浆肌肉样品处理 |
| 2.1.7 1H-NMR谱图采集 |
| 2.1.8 数据处理分析 |
| 2.2 结果与分析 |
| 2.2.1 蒙古马基础生理指标结果分析 |
| 2.2.2 蒙古马耐力运动训练代谢组1H-NMR图谱 |
| 2.2.3 蒙古马血浆和肌肉代谢模式识别分析 |
| 2.2.4 蒙古马血浆和肌肉代谢标志物鉴别分析 |
| 2.3 讨论 |
| 2.3.1 耐力负荷对蒙古马心率及呼吸的影响 |
| 2.3.2 蒙古马磷酸原代谢的变化 |
| 2.3.3 蒙古马糖代谢的变化 |
| 2.3.4 蒙古马脂肪代谢的变化 |
| 2.3.5 蒙古马氨基酸代谢的变化 |
| 2.3.6 蒙古马核苷酸代谢的变化 |
| 2.3.7 蒙古马机体氧化应激的发生 |
| 2.3.8 某些特殊代谢物的变化 |
| 2.4 本章小结 |
| 3 研究二 杂交马耐力运动训练代谢组学比较分析研究 |
| 3.1 材料与方法 |
| 3.1.1 试验动物 |
| 3.1.2 试验运动训练原理 |
| 3.1.3 试验地区概况 |
| 3.1.4 试验器材及测试场地状况 |
| 3.1.5 试验基础数据及样本采集 |
| 3.1.6 核磁检测血浆肌肉样品处理 |
| 3.1.7 1H-NMR谱图采集 |
| 3.1.8 数据处理分析 |
| 3.2 结果与分析 |
| 3.2.1 杂交马基础生理指标结果分析 |
| 3.2.2 杂交马耐力运动训练代谢组1H-NMR图谱 |
| 3.2.3 杂交马血浆和肌肉代谢模式识别分析 |
| 3.2.4 杂交马血浆和肌肉代谢标志物鉴别分析 |
| 3.3 讨论 |
| 3.3.1 耐力负荷对杂交马心率及呼吸的影响 |
| 3.3.2 杂交马磷酸原代谢的变化 |
| 3.3.3 杂交马糖代谢的变化 |
| 3.3.4 杂交马脂肪代谢的变化 |
| 3.3.5 杂交马氨基酸代谢的变化 |
| 3.3.6 杂交马嘌呤核苷酸代谢的变化 |
| 3.3.7 杂交马机体氧化应激的发生 |
| 3.3.8 某些特殊代谢物的变化 |
| 3.4 本章小结 |
| 4 研究三 蒙古马与杂交马耐力运动训练代谢组的差异比较分析研究 |
| 4.1 材料与方法 |
| 4.1.1 试验动物 |
| 4.1.2 试验运动训练原理 |
| 4.1.3 试验地区概况 |
| 4.1.4 试验器材及测试场地状况 |
| 4.1.5 试验基础数据及样本采集 |
| 4.1.6 核磁检测样品处理 |
| 4.1.7 1H-NMR谱图采集 |
| 4.1.8 数据处理分析 |
| 4.2 结果与分析 |
| 4.2.1 蒙古马与杂交马基础生理指标比较分析 |
| 4.2.2 两组马耐力运动训练血浆和肌肉代谢核磁图谱比较 |
| 4.2.3 两组马血浆和肌肉代谢模式识别的比较分析 |
| 4.2.4 两组马血浆和肌肉代谢标志物鉴别比较分析 |
| 4.3 讨论 |
| 4.3.1 耐力负荷对两组马心率及呼吸影响的比较 |
| 4.3.2 两组马磷酸原系统代谢的比较 |
| 4.3.3 两组马无氧供能系统代谢变化的比较 |
| 4.3.4 两组马有氧供能系统代谢的比较 |
| 4.3.5 两组马氨基酸代谢变化的比较 |
| 4.3.6 两组马嘌呤核苷酸代谢变化的比较 |
| 4.3.7 两组马机体氧化应激状态的比较 |
| 4.3.8 某些特殊代谢物的变化比较 |
| 4.4 本章小结 |
| 5 研究四 马耐力运动训练代谢组生物信息学及关联性分析研究 |
| 5.1 材料与方法 |
| 5.1.1 数据及分析 |
| 5.1.2 分析用网站数据库 |
| 5.1.3 分析软件 |
| 5.2 结果与分析 |
| 5.2.1 蒙古马组差异代谢物通路与富集分析 |
| 5.2.2 杂交马组差异代谢物通路与富集分析 |
| 5.2.3 差异代谢物间的关联性分析 |
| 5.3 讨论 |
| 6 结论 |
| 7 创新与展望 |
| 致谢 |
| 参考文献 |
| 作者简介 |
（2）饲料中添加丙氨酰-谷氨酰胺二肽对黄颡鱼幼鱼生长性能、抗氧化能力、免疫应答能力及抗逆能力的影响（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验饲料 |
| 1.2 试验动物及取样 |
| 1.3 氨氮胁迫试验 |
| 1.4 指标测定 |
| 1.5 计算方法 |
| 1.6 统计分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 饲料中添加AGD对黄颡鱼幼鱼生长性能的影响 |
| 2.2 饲料中添加AGD对黄颡鱼幼鱼体成分的影响 |
| 2.3 饲料中添加AGD对黄颡鱼幼鱼血清生化指标的影响 |
| 2.4 饲料中添加AGD对黄颡鱼幼鱼血清抗氧化指标的影响 |
| 2.5 饲料中添加AGD对黄颡鱼幼鱼免疫应答能力的影响 |
| 2.6 饲料中添加AGD对黄颡鱼幼鱼抗逆能力的影响 |
| 3 讨论 |
| 4 结论 |
（3）丙氨酰-谷氨酰胺预处理对氧化应激猪小肠上皮细胞活力和自噬的影响（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.2 氧化应激模型的建立 |
| 1.3 MTT法检测细胞活力 |
| 1.4 细胞抗氧化酶活性和MDA含量的检测 |
| 1.5 LC3-II的免疫荧光定量分析 |
| 1.6 统计分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 Ala-Gln预处理对诱导氧化应激猪小肠上皮细胞活力的影响 |
| 2.2 Ala-Gln预处理对诱导氧化应激猪小肠上皮细胞抗氧化性能的影响 |
| 2.3 Ala-Gln预处理对诱导氧化应激猪小肠上皮细胞自噬蛋白LC3-II的影响 |
| 3 讨论 |
| 3.1 Ala-Gln预处理对诱导氧化应激猪小肠上皮细胞抗氧化性能的影响 |
| 3.2 Ala-Gln预处理对诱导氧化应激猪小肠上皮细胞自噬蛋白LC3-II的影响 |
| 4 结论 |
（4）丙氨酰-谷氨酰胺缓解Diquat诱导的断奶仔猪氧化损伤的影响（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.2 试验动物与试验设计 |
| 1.3 试验饲粮 |
| 1.4 饲养管理 |
| 1.5 样品采集与处理 |
| 1.6 测定指标与方法 |
| 1.6.1 血清抗氧化指标 |
| 1.6.2 空肠、肝脏抗氧化指标 |
| 1.6.3 肝脏谷胱甘肽过氧化物酶4 (G Px4) 、超氧化物歧化酶1 (SOD1) mRNA表达量 |
| 1.6.3. 1 总RNA提取与反转录 |
| 1.6.3. 2 G Px4、SOD1 mRNA表达量检测 |
| 1.7 数据统计 |
| 2 结果 |
| 2.1 Ala-Gln对氧化应激断奶仔猪血清抗氧化指标的影响 |
| 2.2 Ala-Gln对氧化应激断奶仔猪空肠抗氧化指标的影响 |
| 2.3 Ala-Gln对氧化应激断奶仔猪肝脏抗氧化指标的影响 |
| 2.4 Ala-Gln对氧化应激断奶仔猪肝脏GPx4、SOD1 mRNA表达量的影响 |
| 3 讨论 |
| 3.1 Ala-Gln对氧化应激断奶仔猪血清抗氧化指标的影响 |
| 3.2 Ala-Gln对氧化应激断奶仔猪空肠、肝脏抗氧化指标的影响 |
| 3.3 Ala-Gln对氧化应激断奶仔猪肝脏GPx4、SOD1 mRNA表达量的影响 |
| 4 结论 |
（5）Ala-Gln和MOS对仔猪断奶应激的调节作用（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 缩写词表（Abbreviations） |
| 第一章 文献综述 |
| 1 研究目的和意义 |
| 2 国内外研究现状 |
| 2.1 如何调节仔猪断奶应激 |
| 2.2 谷氨酰胺以及丙氨酰谷氨酰胺二肽对仔猪断奶应激的调节作用 |
| 2.3 甘露寡糖对仔猪断奶应激的调节作用 |
| 2.4 研究思路 |
| 3 研究内容与方法 |
| 3.1 Ala-Gln和MOS对断奶仔猪生产性能以及腹泻率的影响 |
| 3.2 Ala-Gln和MOS对断奶仔猪肠道形态以及肠道屏障功能的影响 |
| 3.3 Ala-Gln和MOS对断奶仔猪血液生化指标的影响 |
| 3.4 技术路线 |
| 第二章 试验研究 |
| 试验一 Ala-Gln和MOS对断奶仔猪生产性能以及腹泻率的影响 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.2 试验动物与分组设计 |
| 1.3 试验饲粮 |
| 1.4 饲养管理 |
| 1.5 测定指标与方法 |
| 1.6 数据处理与统计分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 基础饲粮中添加不同剂量MOS和Ala-Gln对仔猪生产性能的影响 |
| 2.2 基础饲粮中添加不同剂量MOS和Ala-Gln对断奶仔猪腹泻率的影响 |
| 3 讨论 |
| 4 结论 |
| 试验二 Ala-Gln和MOS对断奶仔猪肠道黏膜形态以及肠道屏障功能的影响 |
| 1. 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.2 试验动物与分组设计 |
| 1.3 试验饲粮 |
| 1.4 饲养管理 |
| 1.5 测定指标与方法 |
| 1.6 数据处理与统计分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 Ala-Gln和MOS对断奶仔猪肠道形态结构的影响 |
| 2.2 Ala-Gln和MOS对断奶仔猪空肠黏膜超微结构的影响 |
| 2.3 Ala-Gln和MOS对断奶仔猪空肠粘膜Occludin蛋白表达的影响 |
| 2.4 Ala-Gln和MOS对断奶仔猪盲肠内容物菌群的影响 |
| 3 讨论 |
| 3.1 Ala-Gln和MOS对断奶仔猪肠道形态的影响 |
| 3.2 Ala-Gln和MOS对断奶仔肠道屏障功能的影响 |
| 4 结论 |
| 试验三 Ala-Gln和MOS对断奶仔猪血液生化指标的影响 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.2 试验动物与分组设计 |
| 1.3 试验饲粮 |
| 1.4 饲养管理 |
| 1.5 测定指标与方法 |
| 1.6 数据处理与统计分析 |
| 2 结果与分析 |
| 3 讨论 |
| 4 结论 |
| 第三章 本研究的总体结论、创新及有待进一步研究的问题 |
| 1 总体结论 |
| 2 有待进一步研究的问题 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 作者简介 |
（6）谷氨酰胺及其二肽对过氧化氢诱导山羊瘤胃上皮细胞凋亡及凋亡相关基因表达的影响（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 山羊瘤胃上皮传代细胞 |
| 1.2 主要试剂与设备 |
| 1.3 主要溶液与配制 |
| 1.4 试验设计 |
| 1.4.1 H2O2诱导凋亡瘤胃上皮细胞的凋亡率 |
| 1.4.2 Gln及其二肽对H2O2诱导凋亡瘤胃上皮细胞Bcl-2、Bax基因表达量的影响 |
| 1.5 试验方法 |
| 1.5.1 流式细胞(flow cytometry,FCM)技术检测瘤胃上皮细胞凋亡率[膜联蛋白-V(annexin V,AV)/碘化丙啶(propidium iodide,PI)双染法] |
| 1.5.2 Gln及其二肽对H2O2诱导凋亡瘤胃上皮细胞Bcl-2、Bax基因表达的影响 |
| 1.5.2. 1 总RNA提取 |
| 1.5.2. 1. 1 试验前准备 |
| 1.5.2. 1. 2 Trizol提取细胞总RNA |
| 1.5.2. 1. 3 RNA的琼脂糖凝胶电泳 |
| 1.5.2. 1. 4 反转录PCR |
| 1.5.2. 2 FQ-PCR |
| 1.5.2. 2. 1 引物设计 |
| 1.5.2. 2. 2 FQ-PCR体系组成 |
| 1.5.2. 2. 3 FQ-PCR扩增程序 |
| 1.6 数据统计与分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 H2O2诱导凋亡瘤胃上皮细胞的凋亡率 |
| 2.2 Gln及其二肽对H2O2诱导凋亡瘤胃上皮细胞的凋亡率的影响 |
| 2.3 Gln及其二肽对H2O2诱导的凋亡瘤胃上皮细胞Bcl-2、Bax基因表达量的影响 |
| 2.3.1 总RNA提取 |
| 2.3.2 FQ-PCR检测结果 |
| 3 讨论 |
| 3.1 Gln及其二肽对H2O2诱导凋亡细胞凋亡率的影响 |
| 3.2 Gln及其二肽对H2O2诱导凋亡山羊瘤胃上皮细胞Bcl-2、Bax基因表达量的影响 |
| 4 结论 |
（7）不同酸化海水、VE和AGD添加剂对海水青鳉稚鱼RNA/DNA和GPx、PPARα基因表达的影响（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 缩写与符号说明 |
| 第一章 绪论 |
| 1 海洋酸化、危害及防治 |
| 1.1 海洋酸化及其危害 |
| 1.2 海洋酸化的预防 |
| 2 海洋酸化的营养调控 |
| 2.1 VE |
| 2.2 AGD |
| 2.3 VE和AGD的协同作用 |
| 3 GPx |
| 4 PPARα |
| 5 本实验研究的目的与意义 |
| 第二章 材料与方法 |
| 1 实验材料 |
| 1.1 药品和试剂 |
| 1.2 主要实验仪器与设备 |
| 2 实验鱼及其养殖 |
| 2.1 鱼苗的来源 |
| 2.2 海水青鳉的孵化盒养殖 |
| 3 酸化实验 |
| 3.1 不同pH海水浓度设计 |
| 3.2 构建CO_2充气系统 |
| 3.3 仔鱼的选取、暴露、投喂、清理 |
| 3.4 海水青鳉仔鱼0、6周样品的采集 |
| 4 饲料中添加VE和AGD调控海水酸化的实验 |
| 4.1 VE和AGD调控海水酸化的实验设计 |
| 4.2 VE和AGD调控海水酸化的实验 |
| 4.3 饲料的制作 |
| 4.4 样品的采集 |
| 5 测定方法 |
| 5.1 实验前的准备 |
| 5.2 DNA、RNA含量的测定 |
| 5.3 GPx、PPARα基因相对表达量的测定 |
| 6 数据处理方法和应用软件 |
| 第三章 结果与分析 |
| 1 不同酸化海水对海水青鳉稚鱼RNA/DNA的影响 |
| 2 添加不同剂量AGD和VE调控酸化海水中养殖的海水青鳉稚鱼,对其RNA/DNA的影响 |
| 3 GPx、PPARα基因相对表达量 |
| 3.1 海水青鳉总RNA提取及PCR产物电泳 |
| 3.2 PCR产物测序结果 |
| 3.3 扩增曲线和溶解曲线 |
| 3.4 标准曲线的建立和扩增效率计算 |
| 3.5 GPx、APPRα基因相对表达量的计算 |
| 3.6 不同酸化海水对海水青鳉稚鱼GPx基因相对表达量的影响 |
| 3.7 不同酸化海水对海水青鳉稚鱼PPARα基因相对表达量的影响 |
| 3.8 添加不同剂量AGD和VE调控酸化海水中养殖的海水青鳉稚鱼,对其GPx基因相对表达量的影响 |
| 3.9 添加不同剂量AGD和VE调控于酸化海水中养殖的海水青鳉稚鱼,对其PPARα基因相对表达量的影响 |
| 第四章 讨论 |
| 结论 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 攻读硕士期间所发表的论文 |
| 附件 |
（8）谷氨酰胺、谷氨酰胺二肽对草鱼幼鱼生长及生理生化指标的影响（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 文献综述 |
| 1 前言 |
| 2 谷氨酰胺的理化性质 |
| 3 谷氨酰胺的来源、功能及代谢途径 |
| 4 谷氨酰胺的研究现状 |
| 4.1 谷氨酰胺对动物生产性能的影响 |
| 4.2 谷氨酰胺对动物肠道功能的影响 |
| 4.3 谷氨酰胺对动物免疫的影响 |
| 4.4 谷氨酰胺对动物抗氧化功能的影响 |
| 5 谷氨酰胺二肽的基本特性及其代谢 |
| 5.1 谷氨酰胺二肽的理化性质 |
| 5.2 谷氨酰胺二肽在机体中的代谢 |
| 6 谷氨酰胺二肽的研究现状 |
| 6.1 谷氨酰胺二肽对动物生产性能的影响 |
| 6.2 谷氨酰胺二肽对动物肠道功能调节的影响 |
| 6.3 谷氨酰胺二肽对动物免疫的影响 |
| 6.4 谷氨酰胺二肽对动物的抗氧化作用 |
| 7 存在的问题 |
| 8 本研究的目的与意义 |
| 第二章 谷氨酰胺对草鱼幼鱼生长及生理生化指标的影响 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验鱼及试验饲料 |
| 1.2 实验设计 |
| 1.3 试验饲料配方及其营养水平 |
| 2 样品采集与分析 |
| 2.1 生长指标 |
| 2.2 鱼体品质 |
| 2.3 肠道消化酶测定 |
| 2.4 体成分测定 |
| 2.5 血液生理生化指标的测定 |
| 2.6 肠道组织形态的测定 |
| 3 数据统计分析 |
| 4 试验结果 |
| 4.1 谷氨酰胺对草鱼幼鱼生长的影响 |
| 4.2 谷氨酰胺对草鱼幼鱼品质的影响 |
| 4.3 谷氨酰胺对草鱼幼鱼肠道消化酶活力的影响 |
| 4.4 谷氨酰胺对草鱼幼鱼体成分的影响 |
| 4.5 谷氨酰胺对草鱼幼鱼部分血液生理生化指标的影响 |
| 4.6 谷氨酰胺对草鱼幼鱼肠道形态指标的影响 |
| 5 讨论 |
| 5.1 不同谷氨酰胺水平对草鱼幼鱼生长的影响 |
| 5.2 谷氨酰胺对草鱼幼鱼品质及体成分的影响 |
| 5.3 谷氨酰胺对草鱼幼鱼肠道消化酶活力的影响 |
| 5.4 谷氨酰胺对草鱼幼鱼血血清生理生化指标的影响 |
| 5.5 谷氨酰胺对草鱼幼鱼肠道组织学结构的影响 |
| 6 小结 |
| 第三章 谷氨酰胺二肽对草鱼幼鱼生长及生理生化指标的影响 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验鱼及试验饲料 |
| 1.2 实验设计 |
| 1.3 试验饲料配方及其营养水平 |
| 2 样品采集与分析 |
| 2.1 生长指标(同第二章2.1) |
| 2.2 鱼体品质(同第二章2.2) |
| 2.3 肠道消化酶测定(同第二章2.3) |
| 2.4 体成分测定(同第二章2.4) |
| 2.5 血液生理生化指标(同第二章2.5) |
| 2.6 肠道显微镜观察(同第二章2.6) |
| 3 数据统计分析 |
| 4 试验结果 |
| 4.1 谷氨酰胺二肽对草鱼幼鱼生长的影响 |
| 4.2 谷氨酰胺二肽对草鱼幼鱼品质的影响 |
| 4.3 谷氨酰胺二肽对草鱼幼鱼肠道消化酶活力的影响 |
| 4.4 谷氨酰胺二肽对草鱼幼鱼体成分的影响 |
| 4.5 谷氨酰胺二肽对草鱼幼鱼部分血液生理生化指标的影响 |
| 4.6 谷氨酰胺二肽对草鱼幼鱼肠道形态指标的影响 |
| 5 讨论 |
| 5.1 不同谷氨酰胺二肽水平对草鱼幼鱼生长的影响 |
| 5.2 谷氨酰胺二肽对草鱼幼鱼品质及体成分的影响 |
| 5.3 谷氨酰胺二肽对草鱼幼鱼肠道消化酶活力的影响 |
| 5.4 谷氨酰胺二肽对草鱼幼鱼血清生理生化指标的影响 |
| 5.5 谷氨酰胺二肽对草鱼幼鱼肠道组织学结构的影响 |
| 6 小结 |
| 结论 |
| 参考文献 |
| 英文缩写名词索引 |
| 致谢 |
| 作者简介 |
（9）谷氨酰胺二肽对猪肠上皮细胞更新和蛋白质代谢的调控研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第一章 文献综述 |
| 1 肠道小肽吸收利用机制 |
| 1.1 小肽转运途径 |
| 1.2 肽转运载体PepT1特性和调控 |
| 1.3 小肽的代谢 |
| 2 肠道小肽感应与胃肠激素分泌和摄食调控 |
| 3 小肽吸收利用与肠道健康 |
| 4 小肽在动物营养中应用 |
| 4.1 小肽在动物营养中的应用 |
| 4.2 Gln二肽在医学临床上的应用 |
| 5 展望 |
| 6 研究目的与意义 |
| 第二章 谷氨酰胺二肽对猪肠上皮细胞增殖的调控 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 1.3 数据分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 细胞增殖 |
| 2.2 细胞周期 |
| 3 讨论 |
| 4 结论 |
| 第三章 谷氨酰胺二肽对肠上皮细胞小肽转运载体的影响 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 1.3 数据分析 |
| 2 结果与分析 |
| 3 讨论 |
| 4 结论 |
| 第四章 谷氨酰胺二肽对肠上皮细胞蛋白质代谢的调控 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 1.2.1 蛋白质周转 |
| 1.2.2 RT-PCR检测 |
| 1.2.3 Western Blot分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 谷氨酰胺二肽对肠上皮细胞蛋白质周转的影响 |
| 2.2 谷氨酰胺二肽对肠上皮细胞mTOR信号通路的影响 |
| 2.3 谷氨酰胺二肽对肠上皮细胞泛素蛋白酶体途径的影响 |
| 3 讨论 |
| 3.1 蛋白质周转代谢研究 |
| 3.2 谷氨酰胺二肽对蛋白质代谢相关信号通路影响研究 |
| 4 结论 |
| 第五章 研究结论 |
| 参考文献 |
| 附录A 蛋白周转检测试剂配置 |
| 附录B 英文简写词表 |
| 致谢 |
| 作者简历 |
（10）Ala-Gln对断奶仔猪氧化应激的调节作用及其机制初步研究（论文提纲范文）
| 目录 |
| 摘要 |
| Abstract |
| 缩写词表 |
| 第一章 文献综述 |
| 1 研究目的和意义 |
| 2 国内外研究现状 |
| 2.1 氧化应激 |
| 2.2 丙氨酰谷氨酰胺二肽 |
| 2.3 研究思路 |
| 3 研究内容和方法 |
| 3.1 Ala-Gln 对氧化应激仔猪机体抗氧化能力的影响 |
| 3.2 Ala-Gln 对氧化应激状态下仔猪淋巴细胞抗氧化作用 |
| 3.3 利用 H2O2构建猪小肠上皮细胞氧化应激模型 |
| 3.4 Ala-Gln 对氧化应激状态下 IPEC-1 保护作用 |
| 3.5 技术路线图 |
| 第二章 试验研究 |
| 试验一 Ala-Gln对氧化应激仔猪机体抗氧化能力的影响 |
| 摘要 |
| 前言 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验材料 |
| 1.2 试验动物与分组设计 |
| 1.3 试验日粮 |
| 1.4 饲养管理 |
| 1.5 样品收集与处理 |
| 1.6 测定指标与方法 |
| 1.7 数据统计处理 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 血清生化指标及抗氧化能力 |
| 2.2 空肠组织生化指标及抗氧化能力 |
| 2.3 肝脏组织生化指标及抗氧化能力 |
| 2.4 免疫器官指数 |
| 2.5 空肠、肝脏和脾脏组织切片 |
| 2.6 肝脏 GPx4、SOD1 mRNA 表达量分析 |
| 3 讨论 |
| 3.1 Ala-Gln 对断奶仔猪血清 Gln、GSH 含量及抗氧化能力的影响 |
| 3.2 Ala-Gln 对断奶仔猪空肠、肝脏组织抗氧化能力的影响 |
| 3.3 Ala-Gln 对断奶仔猪空肠、肝脏和脾脏组织抗生理结构的影响 |
| 3.4 Ala-Gln 对断奶仔猪肝脏 GPx4、SOD1 mRNA 表达量的影响 |
| 4 小结 |
| 试验二 Ala-Gln对氧化应激状态下仔猪淋巴细胞调控作用 |
| 摘要 |
| 前言 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验设计 |
| 1.2 主要试验试剂与仪器 |
| 1.3 试验动物与淋巴细胞悬液制备 |
| 1.4 试验指标与检测方法 |
| 1.5 统计分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 Ala-Gln 对氧化应激淋巴细胞抗氧化酶活性和 MDA 含量的影响 |
| 2.2 Ala-Gln 对氧化应激淋巴细胞转化率和细胞因子的影响 |
| 3 讨论 |
| 3.1 Ala-Gln 对淋巴细胞抗氧化酶和 MDA 含量的影响 |
| 3.2 Ala-Gln 对淋巴细胞转化率和细胞因子的影响 |
| 4 小结 |
| 试验三 H2O2对猪小肠上皮细胞氧化应激的诱导作用 |
| 摘要 |
| 前言 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验设计 |
| 1.2 试验主要试剂与仪器 |
| 1.3 试验操作准备工作 |
| 1.4 IPEC-1 细胞培养 |
| 1.5 试验指标与检测方法 |
| 1.6 统计分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 H2O2对 IPEC-1 活力的影响 |
| 2.2 H2O2对 IPEC-1 抗氧化酶活性和 MDA 含量的影响 |
| 3 讨论 |
| 4 小结 |
| 试验四 Ala-Gln对氧化应激状态下猪小肠上皮细胞保护作用及其机制初步研究 |
| 摘要 |
| 前言 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 试验设计 |
| 1.2 试验主要试剂与仪器 |
| 1.3 试验操作准备工作 |
| 1.4 IPEC-1 细胞培养 |
| 1.5 试验指标与检测方法 |
| 1.6 统计分析 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 Ala-Gln 对氧化应激状态 IPEC-1 活力的影响 |
| 2.2 Ala-Gln 对 IPEC-1 抗氧化酶活性和 MDA 含量的影响 |
| 2.3 Ala-Gln 对氧化应激状态 IPEC-1 自噬的影响 |
| 3 讨论 |
| 4 小结 |
| 第三章 全文结论、创新点及待解决问题 |
| 1 全文结论 |
| 2 创新点 |
| 3 待解决问题 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
四、丙氨酰-谷氨酰胺二肽对烧伤大鼠血清谷胱甘肽浓度及抗氧化作用的影响（论文参考文献）
- [1]内蒙古马匹耐力运动训练代谢组学的研究[D]. 魏睿元. 内蒙古农业大学, 2020(01)
- [2]饲料中添加丙氨酰-谷氨酰胺二肽对黄颡鱼幼鱼生长性能、抗氧化能力、免疫应答能力及抗逆能力的影响[J]. 李雪,张木子,黎明,章倩,王日昕,姜海波. 动物营养学报, 2019(07)
- [3]丙氨酰-谷氨酰胺预处理对氧化应激猪小肠上皮细胞活力和自噬的影响[J]. 辛向荣,贺琴,游金明,叶亚玲,邓宸玺. 中国畜牧杂志, 2018(08)
- [4]丙氨酰-谷氨酰胺缓解Diquat诱导的断奶仔猪氧化损伤的影响[J]. 辛向荣,叶亚玲,游金明,贺琴,邓宸玺. 动物营养学报, 2018(02)
- [5]Ala-Gln和MOS对仔猪断奶应激的调节作用[D]. 平伟强. 江西农业大学, 2017(03)
- [6]谷氨酰胺及其二肽对过氧化氢诱导山羊瘤胃上皮细胞凋亡及凋亡相关基因表达的影响[J]. 韩奇鹏,掲红东,罗玲,王凯军,周传社,张佩华,孔志伟,汤少勋. 动物营养学报, 2016(10)
- [7]不同酸化海水、VE和AGD添加剂对海水青鳉稚鱼RNA/DNA和GPx、PPARα基因表达的影响[D]. 张茜. 广西大学, 2015(05)
- [8]谷氨酰胺、谷氨酰胺二肽对草鱼幼鱼生长及生理生化指标的影响[D]. 刘庄鹏. 湖南农业大学, 2015(08)
- [9]谷氨酰胺二肽对猪肠上皮细胞更新和蛋白质代谢的调控研究[D]. 贺光祖. 湖南农业大学, 2015(12)
- [10]Ala-Gln对断奶仔猪氧化应激的调节作用及其机制初步研究[D]. 辛向荣. 江西农业大学, 2014(02)