一、活性炭对南瓜粗多糖液的脱色研究（论文文献综述）
王志高,罗红宇[1]（2020）在《南瓜多糖提取分离条件的优化》文中研究指明试验选用锦州当地南瓜为原料,对其中的南瓜多糖进行提取。以投料比、提取温度、提取时间、碱液的浓度为因素进行正交试验,确定提取纯化南瓜多糖的最佳工艺参数,试验结果表明,提取温度为80℃,提取时间为2h,液料比为5:1,碱液浓度在0.4mol/L时为最佳。纯化时采用糖液与乙醇比例为1:3的的沉淀条件,温度62℃,加热32min,活性炭添加量为3%的脱色条件,10%三氯乙酸除蛋白方法和2～3天的透析时间为最佳。
章慧[2]（2019）在《神农香菊茎多糖提取、纯化、结构和抗氧化活性研究》文中研究指明神农香菊（Dendranthema indicum var.aromaticum）系菊科菊属的一个新变种植物,其花、叶有清热解毒之疗效,常用于治疗感冒、咽喉肿痛、目赤肿痛等。国内外学者已从其花、茎、叶中分离出挥发油类、黄酮类、萜类等有效成分,有抗菌、抗氧化和抗炎等活性。然而,对神农香菊茎中多糖的相关研究报道甚少。本文以恩施神农架地区神农香菊茎为原料,对神农香菊茎多糖的提取、纯化、结构及体外抗氧化性进行研究,以期为我国神农香菊茎资源的综合利用提供新的方向和参考依据,主要研究内容如下:（1）比较热水浸提和超声辅助提取法提取神农香菊茎多糖的提取率。热水浸提法最佳工艺条件:料液比1∶40（g/mL）,浸提温度90℃,浸提时间2h,多糖的提取率为5.735%;超声辅助提取法最佳工艺条件:料液比1∶40（g/mL）,超声时间60min,醇沉浓度70%,多糖的提取率为11.385%,较热水浸提法提高了1.99倍。超声提取法的优点是提高产率,明显缩短提取时间,设备条件较简单。（2）以多糖脱色率和回收率为评价指标,比较活性炭、大孔树脂和DEAE-52纤维素3种方法对超声制得神农香菊茎粗多糖的脱色效果。结果显示:当使用的活性炭量为4%、脱色温度为60℃、脱色时间为45min时,多糖的脱色率达到最大为81.586%,但多糖回收率仅有20.445%。静态实验筛选7种大孔吸附树脂,D301树脂其脱色率为91.736%,多糖回收率仅有34.759%。通过DEAE-52纤维素使用不同洗脱剂对粗多糖液进行洗脱,其中A450nm（蒸馏水）<0.002,无色素吸收,该段脱色率较高;A490nm（蒸馏水）>5.5,多糖含量较高,多糖的回收率较高。故DEAE-52对神农香菊茎多糖的脱色效果最佳。神农香菊茎粗多糖固体呈灰褐色,经DEAE-52脱色后的多糖为白色海绵状固体。（3）利用离子交换层析技术对神农香菊茎多糖进一步分离纯化,比较不同离子型（OH-、Cl-、HCO3-）的DEAE-52对多糖的纯化效果。结果表明HCO3-型的纯化效果最好,分辨率较高,洗脱峰数量最多。经HCO3-型DEAE-52层析得到四个级分:DILP-1、DILP-2、DILP-3、DILP-4。（4）HPLC对四个组分的均一性进行测定,确定以DILP-1为检测对象。进一步采用紫外扫描、HPLC、1H-NMR、13C-NMR等现代分析手段对神农香菊茎纯化多糖DILP-1的结构进行了初步分析。UV检测结果显示,DILP-1不含蛋白质及核酸。多角度激光散射测定,DILP-1重均分子量为2.182*104Da。DILP-1的单糖组成分析结果表明DILP-1由葡萄糖、半乳糖、鼠李糖、果糖4种单糖组成,其摩尔比为1∶1.992∶1.577∶2.379。通过1H-NMR、13C-NMR图谱分析,进一步确定DILP-1为多糖。（5）研究热水浸提法与超声提取法得到的神农香菊茎多糖（DILWP、DILUP）对DPPH和ABTS自由基清除能力及总还原能力,结果表明,DILWP、DILUP均有体外抗氧化活性,在一定浓度范围内,呈剂量依赖性。DILUP的抗氧化能力强于DILWP。
陈明星[3]（2019）在《榛子壳多糖提取与生物活性研究及生产车间初步设计》文中指出本课题采用榛子壳为试验原材料,利用超声波辅助热水浸提法提取榛子壳多糖,经活性炭脱色、微滤除杂、化学方法脱蛋白和超滤分级纯化后获得大于100 kDa、50-100 kDa、10-50 kDa和6-10 kDa的四组分不同分子量的榛子壳多糖,并探讨了不同分子量的榛子壳多糖抗氧化能力和降血糖能力,同时,对榛子壳多糖的提取进行了初步的扩大化生产设计。首先,采用超声波辅助热水浸提法提取榛子壳多糖,通过单因素和正交实验优化分析,并得到了榛子壳多糖提取条件为:超声浸提功率为240 W,超声浸提时间40 min,浸提料液比为1:20,提取时间2 h和提取温度80℃,榛子壳多糖的提取率达到最高,提取得率为9.23 mg/g。同时,研究了榛子壳多糖微滤制备工艺,确定了榛子壳多糖最优微滤条件:料液温度35℃,料液浓度20 g/L,操作压力0.12 MPa,测得平均膜通量为23.78 L/m2·h。将微滤后的多糖溶液进行Sevag、三氯乙酸法（TCA）和等电点沉淀法的脱蛋白比较,TCA法脱除蛋白的作用最佳,蛋白的脱除率为65.32%,多糖的保留率为69.56%。通过超滤膜对榛子壳多糖脱蛋白微滤液进行分离纯化,经超滤膜纯化后分别截留获得分子量为大于100 kDa、50-100 kDa、10-50 kDa和6-10 kDa四种分子量榛子壳多糖。分子量分布分别为:10.2%、67.8%、5.7%和16.3%。然后,对榛子壳多糖分别进行了体外和体内抗氧化活性研究。通过体外抗氧化实验表明:采用榛子壳多糖对ABTS、超氧阴离子和羟基自由基脱除能力测定,确定四组不同分子量榛子壳多糖清除ABTS自由基由强到弱的排序是50-100 kDa>大于100 kDa>10-50 kDa>6-10 kDa分子量的多糖,半数清除率浓度(IC50),分别为:27.8 mg/mL,21.4 mg/mL,29.5 mg/mL和100.9 mg/mL;榛子壳多糖清除超氧阴离子的效果不是很强,四种分子量的多糖对超氧阴离子的清除率均低于50%。不同分子量榛子壳多糖对羟基自由基的去除效果较好,清除能力由大到小排序为:50-100 kDa>6-10 kDa>10-50 kDa>大于100 kDa,羟基自由基半数清除率浓度(IC50)分别为:11.2 mg/mL,3.4 mg/mL,7.7 mg/mL和7.1 mg/mL。体内实验表明:采用对糖尿病造模后的小鼠给药不同分子量的榛子壳多糖,检测小鼠血清和肝匀浆的SOD和MDA活力值,分析后得知,不同分量榛子壳多糖可以增强小鼠SOD活力,降低丙二醛MDA含量。其中100kDa和50-100 kDa分子量的多糖效果较为显着。同时,对不同分子量榛子壳多糖进行了降血糖功能性研究,利用四氧嘧啶药物对小鼠进行造模,并对成模后小鼠进行连续给药不同分子量不同剂量的多糖,21 d后检测小鼠血糖值,比较分析得知大于100 kDa和50-100 kDa的榛子壳多糖具有延缓患糖尿病小鼠体重的下降趋势,并且使得糖尿病建模小鼠的血糖分别降低了20.52%和24.80%,50-100 kDa的多糖比大于100 kDa的多糖降血糖效果好,两组分子量多糖均可以增加实验建模小鼠血清的胰岛素含量。最后,通过榛子壳多糖的提取、纯化及生物活性研究结果,对年产1500 kg榛子壳多糖生产进行了初步设计,初步设计项目总投资1700万元。以销售利润率和投资利润率作为评价指标,经过财务经济效益分析后,得到两个指标分别为14.27%和37.79%,说明利润率较高,并且由计算得出该项目投资回收期为2-3年,盈亏平衡点为1003.5万元,经营安全率为55.87%,表明榛子壳多糖开发项目抗风险能力较强。
张家成[4]（2018）在《蓝靛果多糖提取纯化及其抗糖基化的功能评价》文中提出以蓝靛果为原料,对蓝靛果多糖进行了提取、纯化研究,测定分子量和单糖组成,并研究了其对体外糖基化模型的抑制作用。利用正交试验的方法优化了热水浸提法和复合酶法提取蓝靛果多糖的提取工艺。热水浸提法的最佳提取条件为料液比为1:20g/mL,浸提时间3h,浸提温度50℃,多糖得率为21.53%（干重）;复合酶法提取的最佳条件为复合酶添加量4%（果胶酶960U/g和纤维素酶800U/g）,酶解温度60℃和酶解时间45min,此条件下的多糖得率为24.43%（干重）。采用响应曲面的方法对超声提取蓝靛果多糖的工艺进行了优化,得到的最佳条件为超声时间67min、浸提温度41℃、超声功率175W。在该条件下进行验证实验,所得结果为24.34%（干重）。确定超声辅助提取法为提取蓝靛果多糖的最佳方法。采用活性炭吸附法对多糖粗提液进行脱色,活性炭添加量为5%,脱色温度为75℃,脱色时间为60min,在此条件下,脱色率达98.1%,多糖保留率达到95%。采用DEAE-Sepharose Fast Flow离子交换柱层析和Sephadex G-100葡聚糖凝柱胶层析对蓝靛果多糖进行分离纯化,得到一个单一对称峰,表明了蓝靛果多糖（LEP）为一个单一组分,回收率为59.67%。通过高效液相色谱法（HPLC）测定蓝靛果多糖组份的相对分子质量为8375Da;采用气相色谱法（GC）测定蓝靛果多糖的单糖组成为葡萄糖。建立体外非酶糖基化模型（BSA-葡萄糖模型）模拟反应体系,蓝靛果多糖做天然抑制剂,氨基胍为阳性对照组,蓝靛果多糖对果糖胺、乙二醛（GO）、5-羟甲基糠醛（5-HMF）、类黑精、戊糖素和AGEs都有一定的抑制作用,且具有一定的剂量关系;通过SDS-PAGE电泳证实蓝靛果多糖在阻止糖与蛋白质交联上有一定作用。不同浓度的LEP对醛糖还原酶（AR）具有一定剂量效果的抑制作用。
安召阳[5]（2016）在《南瓜多糖缓释微胶囊的制备》文中研究指明南瓜,一种一年生的草本蔓生植物,富含大量活性物质南瓜多糖（Pumpkin polysaccharide,PP）,具有降血糖、降血压、降血脂、抗肿瘤、增强免疫力等生理活性。南瓜多糖溶于水,具有较强的吸水溶胀性,不含热量,不易被人体消化吸收,从而延长了南瓜多糖在胃肠道中的滞留时间,降低食物的转化速度,使人产生饱腹感。可提高胰岛素的敏感性,提高糖耐量,日益成为糖尿病人的优选保健产品,我国糖尿病人达到了1.14亿人,研发一种基于天然南瓜多糖健康食品迫在眉睫。本论文对冷冻-超声波耦合辅助法提取、纯化南瓜多糖工艺进行了优化,建立了多糖微胶囊的制备方法,取得如下主要研究结果:1、冷冻-超声波耦合辅助法提取南瓜多糖,并对南瓜多糖提取条件进行单因素试验和四因素三水平的L9（34）正交试验,得到了最佳提取工艺为:南瓜浆液-20℃、2 h处理,560 W的超声功率,90 min的反应时间,1∶5（W∶V）的料液比,浸提温度为60℃。得到南瓜多糖的提取率为13.65 mg/g。2、利用95%乙醇洗涤、sevage法、透析等方法纯化南瓜多糖,得到了平均含量为83.85%的南瓜多糖粉。3、通过南瓜多糖对α-葡萄糖苷酶抑制的试验,由试验结果分析可知:随着南瓜多糖溶液体积的增加,其抑制率增长相当缓慢,尤其后期涨势基本保持不变。确定了试验中所提取的南瓜多糖还是有活性的,也可以从侧面认定南瓜多糖的降血糖作用不是通过抑制α-葡萄糖苷酶来实现的。4、以壳聚糖和海藻酸钠为壁材,制备了壳聚糖/海藻酸钠体系的微胶囊。采取单因素试验和正交试验,对微胶囊制备工艺进行优化,获得南瓜多糖微胶囊的最佳配方为:浓度为3.5%的海藻酸钠,浓度为4%的CaCl2,浓度为0.2%的壳聚糖,芯壁比为1:3。5、通过体外模拟胃肠液对微胶囊缓释效果进行评价,微胶囊在模拟胃液中经过3小时的释放之后继续在模拟肠液中经过5.5小时的释放,其释放率分别为15.20%、41.31%左右。总计8.5个小时的释放,南瓜多糖的总释放率达到了56.51%。微胶囊将在肠道里持续释放较长时间。
孙芳艳[6]（2016）在《普鲁兰多糖提取工艺优化及其应用研究》文中研究指明本文以出芽短梗霉（CGMCC.7055）为出发菌株,经发酵培养获得普鲁兰多糖发酵液进行下游提取优化实验。以摒弃传统絮凝除菌、乙醇沉淀法为目的,以最终的工业化生产为目标。采用除菌、脱蛋白、脱色、超滤、浓缩、干燥的工艺流程进行发酵液的提取,并对提取得到的普鲁兰多糖进行吸湿保湿性和黏度特性的研究。并将其与壳聚糖复配制成可食用膜,研究复配比例对普鲁兰多糖与壳聚糖复配膜（pul-chitosan）的性质影响。以下是本文主要结论:首先对发酵液进行除菌处理,本文选取板框过滤除去菌体。通过单因素及正交优化实验,确定条件为滤布孔径1200目,硅藻土添加量1.4%（w/v）,普鲁兰多糖溶液的浓度40 g/L,此时菌体去除率为99.54%,粗多糖得率为93.92%。对活性炭、双氧水两种脱色方法分别进行单因素及优化实验。通过脱色率、粗多糖得率及分子量的对比,确定使用活性炭脱色,脱色条件为:E型活性炭,添加量为1.1%（w/v）,pH为6,温度为42℃,时间为40 min,此时脱色率为91.69%,粗多糖得率为79.73%。对实验室获得的普鲁兰多糖与市售样品进行红外光谱、核磁共振扫描、紫外全波长扫描、刚果红实验测定。可得到结论:其在结构上判定为同一种物质,即普鲁兰多糖。普鲁兰多糖的吸湿率（27.9%）、保湿率（89%）与透明质酸（29%;94%）不相上下（RH=81%）。质量浓度为1 mg/mL的普鲁兰（黏度为42.7mPa·s）保湿性能最佳。普鲁兰多糖黏度几乎不受温度、pH以及Na+浓度的影响,表现出较好的黏度稳定性。将普鲁兰多糖与壳聚糖按照（1:3,2:2,3:1）比例复配成可食用膜后,显着地改善了普鲁兰多糖膜的机械性能以及阻氧性。壳聚糖与普鲁兰多糖可食用膜的最优复配比为1:3,此时膜的厚度为55.4 μm、抗拉伸强度为59.24 MPa、断裂伸长率为2.47%、水蒸气透过系数为0.415 g.mm/（m2.h·kPa）、水溶性为67%、阻氧性为8.92 g/100g。FTIR结果证明普鲁兰多糖与壳聚糖之间存在强烈的氢键作用。当壳聚糖与普鲁兰多糖以1:3的比例进行复配时共混效果最佳。
谢勇[7]（2014）在《木瓜多糖的提取工艺优化及其抗氧化活性研究》文中研究表明以木瓜多糖得率为实验指标,采用超声波辅助热水浸提法提取木瓜多糖。在单因素实验的基础上,利用二次回归正交旋转组合设计优化木瓜多糖的提取工艺条件,求出最佳工艺参数。以钛酸四丁酯为钛源,采用溶胶-凝胶法制备FeSO4掺杂的光催化剂TiO2,并将光催化剂负载于活性炭上,然后将活性炭填装于冷电弧-光催化-吸附集成装置中,并用该装置对木瓜多糖进行脱色。以木瓜多糖的脱色率和糖保留率为指标,利用数学建模的方法建立木瓜多糖的冷电弧-光催化-吸附脱色工艺的回归模型,并确定最佳脱色工艺条件。将脱色后的木瓜多糖粗提液进行分离、纯化、鉴定,然后研究木瓜多糖在体外的抗氧化活性及其在分离过程中抗氧化活性的变化。利用二次回归正交旋转组合设计对木瓜多糖提取工艺进行优化,得到回归方程：Y=-39.955+0.0667z1+0.667z2+0.2425z3+0.837z4-0.002z3Z4-0.0013z12-0.0098z22-0.0008z 32-0.005z22实验结果表明：在超声处理时间26.0min、液固比34：1、水浴时间63.0min及水浴温度71.0℃的条件下,木瓜多糖得率预测值为9.6%,验证值达9.7%。在研究探讨多指标不同权重系数对实验指标影响的基础上,确定木瓜多糖脱色率和多糖保留率的权重各占50%。在单因素实验基础上,利用二次回归正交旋转组合设计对脱色工艺条件进行优化,得到回归方程：Y=51.72-0.625z1+0.8z2+0.738z3+0.505z4+0.085z1z4+0.059z2z3-0.391z12-0.049z22-0.043z 32-0.013z42结果表明：在脱色时间23.0 min、电压24.0kV、活性炭填充率41.0%及木瓜多糖浓度3.7mg·mL-1条件下,脱色率和多糖保留率分别为73.2%和76.6%。木瓜多糖提取液脱色率和多糖保留率的综合指标达到最佳值74.9,与预测值73.7相差1.6%。以木瓜多糖粗提液、脱色后的多糖液及分离纯化后的木瓜多糖液为研究对象,探究其在体外清除羟基自由基·OH、超氧自由基·O-2清除率及总还原能力。实验结果表明：木瓜多糖具有一定的抗氧化活性,且随其纯度的增加而逐渐降低,纯化后木瓜多糖清除羟基自由基·OH的能力为5.0%,清除超氧阴离子·O-2的能力为8.2%,还原力为0.294,与木瓜多糖粗提液相比,分别下降了92.6%、85.3%及89.7%,且木瓜多糖的抗氧化能力与其浓度呈正相关性。说明木瓜体系中不仅木瓜多糖具有抗氧化活性,其它成分也有一定的抗氧化能力。另外,脱色工艺破坏了木瓜多糖的部分抗氧化活性。
王中星[8]（2013）在《南瓜多糖提取工艺的优化及其抗氧化活性研究》文中进行了进一步梳理以南瓜多糖得率为实验指标,将超声波处理辅助热水浸提的方法应用于南瓜多糖的提取研究。根据介质阻挡放电（DBD）产生冷电弧（NTP）的原理,设计制作了冷电弧反应器,利用冷电弧中的紫外线能激发光催化剂产生自由基的原理,将负载有Ti02光催化剂的活性炭颗粒置于冷电弧反应器内,整合成冷电弧-光催化-吸附反应器,应用于南瓜多糖的脱色研究。以Vc为对照,研究了南瓜多糖的抗氧化活性以及经过脱色后南瓜多糖的抗氧化活性的变化。在单因素实验研究的基础上,利用二次回归正交旋转组合设计对南瓜多糖提取工艺进行优化,得到回归方程：Y=37.0+0.415X1+0.200X2+0.345X3+0.415X4-0.343X12-0.294X22-0.333X32-0.406X42实验结果表明最优提取工艺条件为：水浸提时间11.5min、水浸提温度71.6℃、液固比52.6：1/（ml：g）、超声波处理时间16.3mmin,在此条件下提取南瓜多糖得率为37.5%。在研究探讨多指标不同权重系数对实验指标影响的基础上,实验确定以南瓜多糖脱色率和多糖保留率各占50%权重。在单因素实验实验基础上,利用二次回归正交旋转组合设计对脱色工艺条件进行优化,得到回归方程：Y=49.0+1.31Z1-0.0239Z12+3.85Z2-4.64Z22+0.533Z4-0.00536Z42+0.234Z2Z3-0.280Z3实验结果表明：冷电弧-光催化-吸附反应器对南瓜多糖脱色的最佳工艺条件为：脱色时间27.4min、脱色电压1.2万伏、活性炭在装置中的填充率15%、多糖溶液进入装置中的流速49.7ml/min。此条件下南瓜多糖提取液脱色率和多糖保留率的综合指标达到78.0%。采用同一批新鲜南瓜果肉组织作为实验原材料。抗氧化活性实验结果表明：南瓜多糖具有一定的抗氧化活性,和Vc相比南瓜多糖清除羟基自由基的能力相当于Vc的7.32%,清除超氧阴离子的能力相当于Vc的8.06%,还原力相当于Vc的5.06%,螯合金属离子的能力相当于Vc的1.19%,经过脱色处理后的南瓜多糖抗氧化活性下降了13.2%～35.6%,说明该脱色条件对南瓜多糖的结构及抗氧化活性产生一定的破坏。
闫明明[9]（2013）在《基于枣酒生产的大枣多糖提取工艺研究》文中认为大枣多糖是大枣中一类很重要的物质，具有多种生物活性，在食品、保健品以及医药领域都有着极为广泛的应用，尤其在生物医药方面，具有极为广阔的市场前景和极高的应用价值。因此，关于大枣多糖的提取及其应用成为当前研究的一个热点。但目前的提取工艺在实际应用中发现其存在很多问题：首先，醇沉过程中乙醇消耗量多，且其回收过程能量消耗大；其次，多糖提取过程中还会产生大量的枣泥；第三，醇沉后或醇回收后会产生大量的含有糖的稀枣汁溶液。这些在目前大枣多糖的提取工艺中考虑很少，而这必然会增加大枣多糖的生产成本，且会产生较多的废液或污染物。针对上述问题，本课题对大枣多糖提取的工艺做出一些改进，将大枣多糖的提取和枣酒生产结合起来，解决了目前大枣多糖提取工艺中的乙醇回收难，枣泥的浪费等问题，有利于大枣多糖的工业化生产。因此，具有很重要的现实意义。本课题以陕西佳县大枣为原料，选用Lafazyme CL果胶酶和国产果胶酶进行大枣汁的提取，并对果胶酶加量、提取温度、提取时间等进行优化。用木瓜蛋白酶和酸性蛋白酶对大枣多糖进行脱蛋白的研究，并通过单因素和响应面实验对蛋白酶解条件进行优化。对大枣多糖进行了脱色研究，通过比较5种树脂的脱色效果，选择出合适的大孔树脂进行实验，对其脱色条件进行了优化，得到较适宜pH、树脂用量、脱色温度和脱色时间。最后，对脱色后的树脂进行再生实验。结果表明：用果胶酶Lafazyme CL进行大枣多糖的提取，在室温，酶加量为0.05g/10L，酶解时间为24h的条件下，多糖的得率为7.44%；且提取后的大枣多糖溶液较澄清，其多糖在醇沉时为絮状沉淀。用国产果胶酶提取大枣多糖，其最佳工艺条件为：酶加量0.5g/10L、提取温度52℃、提取时间45min，在此条件下，大枣多糖的得率为7.29%；其多糖在醇沉时呈现粉末状沉淀。在大枣多糖脱蛋白过程中，酸性蛋白酶脱蛋白的效果要好于木瓜蛋白酶；对酸性蛋白酶分别进行单因素和响应面试验，得出其脱蛋白的最佳工艺条件为：酶加量为0.4g/10L、温度42℃、时间为90min，在此条件下，大枣多糖蛋白质的去除率达75.15%。通过比较5种树脂的脱色效果，选择LSA-900E树脂进行脱色实验，在pH为3、树脂:糖液为1:8、温度40℃、时间为150min的条件下，脱色率为55.85%，多糖保留率可达88.66%。对脱色后的树脂，用70%的乙醇和2%的NaOH进行树脂的再生，重复使用4次，树脂的脱色能力仍然较稳定。
岳金玫[10]（2012）在《攀枝花块菌多糖的提取、纯化及抗氧化活性研究》文中研究指明块菌作为一种稀有食用真菌,具有丰富的营养和优越的保健功能。本研究选用中国”块菌之乡”攀枝花出产的块菌,采用现代提取、分离技术提取块菌中的多糖,采用木瓜蛋白酶和大孔树脂AB-8对所得粗多糖中的杂质蛋白质、色素进行纯化分离,研究了攀枝花块菌多糖的体外抗氧化性能,主要研究内容和结论如下：1.系统比较了四种不同类型的方法提取块菌中多糖,在单因素试验的基础上,利用Box-Benhnken中心组合试验,以多糖提取率和多糖含量同为响应值对四种提取方法进行工艺条件的响应面优化。结果表明：传统热水浸提法的最佳工艺参数为提取温度为90℃、提取时间为60min、料液比为33：1,在该条件下多糖理论提取率为13.45%,理论含量为70.75%,验证得实际提取率为13.32%,实际含量71.55%；酶法辅助提取法的最佳工艺条件为酶解时间65min、酶解温度61℃、酶用量1.6%、pH为5.6,多糖理论提取率为15.00%,理论含量为74.19%,实际提取率为14.31%,实际含量74.96%；超声波辅助提取法的最佳工艺条件为超声波时间36min、超声波温度50℃、液料比40：1、超声波功率140W,多糖的理论提取率为18.42%,实际提取率为18.15%,理论含量为74.70%,实际含量71.04%；超声波协同酶法提取的最优工艺条件为超声波功率140W、超声波时间27min、pH值6.4、酶解时间20min,多糖的理论提取率为21.11%,实际提取率为20.91%；理论含量为71.93%,实际含量72.70%。超声波协同酶法的多糖提取率比单独使用生物酶或者超声波都高,是热水浸提的1.6倍。因此,超声波协同酶法提取块菌多糖效果最佳。2.通过比较TCA法、Sevage法、酶结合Sevage法三种方法的脱蛋白效果,以蛋白脱除率和多糖回收率为指标,得到最佳脱蛋白方法是酶结合Sevage法。在单因素试验的基础上进行响应面优化,其最佳的脱蛋白条件为酶解时间2h、氯仿：正丁醇（v/v）为5.6：1、振摇时间20min,蛋白脱除率为73.16%,多糖回收率为85.47%。3.选用AB-8、X-5、D101三种大孔树脂和活性炭、硅藻土、活性炭+硅藻土、高岭土、双氧水共八种不同的处理进行脱色试验,通过比较脱色率和多糖回收率最后选取AB-8大孔树脂吸附进行脱色试验。在单因素试验的基础上进行响应面优化,得到最优工艺条件为脱色温度40℃、摇床转速170r/min、脱色时间5h,脱色率为76.02%,多糖回收率为84.23%。4.块菌粗多糖TIP脱蛋白和脱色处理后透析除杂和超滤离心,得到块菌多糖TIP-Ⅲ（分子质量>100KD）、TIP-Ⅱ （100KD>分子质量>50KD）、TIP-Ⅰ（分子质量<50KD）。5.通过五种不同的体系（总还原能力、羟自由基·OH, DPPH·、超氧阴离子O2-·、螯合金属离子）研究了块菌粗多糖及其不同组分的抗氧化性能。结果表明块菌多糖具有较强的抗氧化能力,其能力的大小与多糖质量浓度存在正相关性；清除自由基的能力依次为TIP-Ⅲ>TIP-Ⅱ>TIP-Ⅰ>TIP,表明大分子质量的块菌多糖的抗氧化活性强于低分子质量的块菌多糖。
二、活性炭对南瓜粗多糖液的脱色研究（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、活性炭对南瓜粗多糖液的脱色研究（论文提纲范文）
（1）南瓜多糖提取分离条件的优化（论文提纲范文）
| 1 实验材料与方法 |
| 1.1 实验材料、试剂及设备 |
| 1.2 实验方法 |
| 1.2.1 粗多糖的提取工艺。 |
| 1.2.2 南瓜多糖的提取。 |
| 1.2.3 南瓜多糖的纯化。 |
| 1.3 多糖含量的测定 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 苯酚-硫酸法测定糖含量标准曲线制作 |
| 2.2 浸提温度对南瓜多糖得率的影响 |
| 2.3 碱液提取南瓜多糖最佳工艺的确定 |
| 2.4 沉淀剂浓度对粗多糖纯化的影响 |
| 2.5 南瓜多糖脱色条件的响应面优化 |
| 2.6 Box-Behnken响应面试验结果及分析 |
| 2.7 响应面分析及优化 |
| 2.8三氯乙酸浓度对粗多糖纯化的影响 |
| 3 结论 |
（2）神农香菊茎多糖提取、纯化、结构和抗氧化活性研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 1 绪论 |
| 1.1 多糖的研究概况 |
| 1.2 多糖的提取 |
| 1.2.1 溶剂提取法 |
| 1.2.2 酶法 |
| 1.2.3 超声波与微波辅助提取法 |
| 1.2.4 亚临界水萃取法 |
| 1.3 多糖的分离、纯化 |
| 1.3.1 多糖的分离 |
| 1.3.2 多糖的纯化 |
| 1.3.3 多糖含量的测定 |
| 1.3.4 多糖分子量的测定 |
| 1.3.5 多糖的结构分析 |
| 1.4 多糖的药理活性 |
| 1.4.1 抗氧化性 |
| 1.4.2 抗肿瘤 |
| 1.4.3 免疫调节作用 |
| 1.4.4 其他的活性 |
| 1.4.5 多糖研究中存在的问题 |
| 1.5 菊属多糖的研究概述 |
| 1.5.1 菊属多糖的药理作用 |
| 1.5.2 菊属多糖的化学研究 |
| 1.5.3 菊属其他成分的研究 |
| 1.6 本课题的研究目的及意义 |
| 2 神农香菊茎多糖提取工艺的研究 |
| 2.1 材料、仪器与试剂 |
| 2.1.1 试验材料 |
| 2.1.2 主要仪器 |
| 2.1.3 试验试剂 |
| 2.2 试验方法 |
| 2.2.1 神农香菊茎多糖含量测定方法研究 |
| 2.2.2 神农香菊茎多糖的提取工艺研究 |
| 2.2.3 数据处理 |
| 2.3 结果 |
| 2.3.1 神农香菊茎多糖的含量测定结果 |
| 2.3.2 热水浸提法的分析结果 |
| 2.3.3 超声辅助提取法的分析结果 |
| 2.3.4 两种提取方法的比较 |
| 2.4 讨论 |
| 2.5 本章小结 |
| 3 神农香菊茎多糖的纯化 |
| 3.1 材料、仪器与试剂 |
| 3.1.1 试验材料 |
| 3.1.2 主要仪器 |
| 3.1.3 试验试剂 |
| 3.2 试验方法 |
| 3.2.1 神农香菊茎多糖的分级沉淀 |
| 3.2.2 神农香菊茎粗多糖不同脱色方法比较 |
| 3.2.3 三种DEAE-52 离子交换层析 |
| 3.2.4 数据处理 |
| 3.3 结果 |
| 3.3.1 神农香菊茎多糖分级沉淀结果 |
| 3.3.2 不同脱色方法的比较 |
| 3.3.3 三种DEAE-52 纤维素柱层析纯化多糖结果比较 |
| 3.4 讨论 |
| 3.5 本章小结 |
| 4 神农香菊茎多糖结构和组成分析 |
| 4.1 材料、仪器与试剂 |
| 4.1.1 试验材料 |
| 4.1.2 主要仪器 |
| 4.1.3 试验试剂 |
| 4.2 试验方法 |
| 4.2.1 神农香菊茎多糖四个组分的相对分子量及分布的测定 |
| 4.2.2 DILP-1的紫外吸收光谱 |
| 4.2.3 DILP-1的单糖组成测定 |
| 4.2.4 ~1H-NMR分析 |
| 4.2.5 ~(13)C-NMR分析 |
| 4.3 结果 |
| 4.3.1 神农香菊茎多糖四个组分的分子量及分布结果 |
| 4.3.2 DILP-1紫外吸收光谱分析 |
| 4.3.3 DILP-1的单糖组成分析 |
| 4.3.4 DILP-1的~1H-NMR、~(13)C-NMR的测定结果 |
| 4.4 讨论 |
| 4.5 本章小结 |
| 5 神农香菊茎多糖的抗氧化作用研究 |
| 5.1 材料、仪器与试剂 |
| 5.1.1 试验材料 |
| 5.1.2 主要仪器 |
| 5.1.3 试验试剂 |
| 5.2 试验方法 |
| 5.2.1 DPPH自由基清除能力的测定 |
| 5.2.2 ABTS自由基清除能力的测定 |
| 5.2.3 铁还原抗氧化能力的测定 |
| 5.2.4 数据处理 |
| 5.3 结果 |
| 5.3.1 DPPH自由基清除能力分析 |
| 5.3.2 ABTS自由基清除能力分析 |
| 5.3.3 总抗氧化能力分析(FRAP法) |
| 5.4 讨论 |
| 5.5 本章小结 |
| 6 结果及展望 |
| 6.1 总结 |
| 6.2 创新点 |
| 6.3 展望 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 攻读学位期间的研究成果 |
（3）榛子壳多糖提取与生物活性研究及生产车间初步设计（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第1章 绪论 |
| 1.1 多糖的研究进展 |
| 1.1.1 多糖提取方法研究 |
| 1.1.2 多糖纯化方法研究 |
| 1.1.3 多糖活性研究 |
| 1.2 榛子的研究进展 |
| 1.2.1 榛子的概述 |
| 1.2.2 榛子多糖的研究进展 |
| 1.3 研究的目的与意义 |
| 1.4 本课题研究的主要内容 |
| 第2章 材料与方法 |
| 2.1 实验材料、试剂与分析仪器 |
| 2.1.1 实验用分析试剂 |
| 2.1.2 实验材料 |
| 2.1.3 实验仪器 |
| 2.2 实验方法 |
| 2.2.1 技术路线 |
| 2.2.2 多糖含量的测定 |
| 2.2.3 蛋白质含量测定 |
| 2.2.4 榛子壳多糖的提取 |
| 2.2.5 榛子壳多糖的脱色 |
| 2.2.6 榛子壳多糖微滤初步纯化 |
| 2.2.7 榛子壳多糖的脱蛋白 |
| 2.2.8 榛子壳多糖超滤纯化分级 |
| 2.2.9 榛子壳多糖抗氧化能力研究 |
| 2.2.10 榛子壳多糖降血糖功能性研究 |
| 第3章 榛子壳多糖的提取与分离纯化 |
| 3.1 标准曲线制作 |
| 3.2 热水浸提榛子壳多糖工艺优化 |
| 3.2.1 热水浸提法单因素研究 |
| 3.2.2 热水浸提榛子壳多糖正交实验结果分析 |
| 3.3 超声辅助浸提榛子壳多糖工艺条件优化 |
| 3.3.1 超声辅助浸提单因素研究 |
| 3.3.2 超声辅助浸提正交实验结果分析 |
| 3.4 榛子壳多糖活性炭法脱色研究 |
| 3.5 微滤法对榛子壳多糖初步纯化研究 |
| 3.5.1 微滤法初步纯化单因素分析 |
| 3.5.2 微滤法初步纯化工艺正交实验分析 |
| 3.6 榛子壳多糖脱蛋白方法分析 |
| 3.6.1 蛋白质测定标准曲线的绘制 |
| 3.6.2 榛子壳多糖Sevag法脱蛋白研究 |
| 3.6.3 榛子壳多糖TCA法脱蛋白研究 |
| 3.6.4 榛子壳多糖等电点沉淀法脱蛋白研究 |
| 3.6.5 榛子壳多糖三种方法脱蛋白效果比较 |
| 3.7 榛子壳多糖超滤纯化分级工艺研究 |
| 3.7.1 超滤纯化榛子壳多糖的制备 |
| 3.7.2 不同分子量榛子壳多糖的制备 |
| 3.8 本章小结 |
| 第4章 榛子壳不同分子量多糖的活性研究 |
| 4.1 榛子壳多糖的抗氧化活性研究 |
| 4.1.1 榛子壳不同分子量多糖体外抗氧化活性研究 |
| 4.1.2 榛子壳多糖的体内抗氧化活性研究 |
| 4.2 榛子壳不同分子量多糖对小鼠降血糖作用研究 |
| 4.2.1 不同分子量多糖对建模小鼠降血糖作用初筛 |
| 4.2.2 榛子壳不同分子量多糖对建模小鼠体重影响研究 |
| 4.2.3 榛子壳不同分子量多糖降血糖功能性研究 |
| 4.2.4 榛子壳不同分子量多糖对建模小鼠胰岛素水平的作用 |
| 4.3 本章小结 |
| 第5章 年产1500 kg榛子壳多糖加工车间初步设计 |
| 5.1 生产车间总平面设计 |
| 5.1.1 榛子壳多糖生产车间选址 |
| 5.1.2 榛子壳多糖生产工艺设计 |
| 5.2 技术经济分析 |
| 5.2.1 投资概算 |
| 5.2.2 成本费用概算 |
| 5.2.3 利润总额概算 |
| 5.2.4 财务指标分析 |
| 5.3 榛子壳多糖生产车间设计图 |
| 5.4 本章小结 |
| 结论 |
| 参考文献 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文及其它成果 |
| 致谢 |
| 个人简历 |
（4）蓝靛果多糖提取纯化及其抗糖基化的功能评价（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 1 绪论 |
| 1.1 蓝靛果的研究现状 |
| 1.1.1 蓝靛果简介 |
| 1.1.2 蓝靛果研究现状 |
| 1.1.3 蓝靛果的生理功效 |
| 1.2 植物活性多糖的研究概况 |
| 1.2.1 多糖的提取方法 |
| 1.2.2 多糖的纯化方法 |
| 1.2.3 多糖的生物活性 |
| 1.3 糖基化反应(美拉德反应) |
| 1.3.1 糖基化反应简介 |
| 1.3.2 美拉德反应各阶段产物 |
| 1.3.3 AGEs的危害 |
| 1.3.4 AGEs与糖尿病 |
| 1.4 本课题的研究意义 |
| 1.4.1 课题来源 |
| 1.4.2 主要研究内容 |
| 2 蓝靛果多糖提取工艺的研究 |
| 2.1 引言 |
| 2.2 材料与仪器 |
| 2.2.1 实验仪器 |
| 2.2.2 实验试剂 |
| 2.2.3 实验原料 |
| 2.3 蓝靛果主成份的测定 |
| 2.3.1 水分测定 |
| 2.3.2 灰分测定 |
| 2.3.3 蛋白质测定 |
| 2.3.4 脂肪测定 |
| 2.3.5 还原糖测定 |
| 2.3.6 总糖的测定 |
| 2.4 标准曲线及多糖测定方法 |
| 2.4.1 标准曲线的绘制 |
| 2.4.2 蓝靛果多糖含量的测定 |
| 2.5 热水浸提蓝靛果多糖工艺的研究 |
| 2.5.1 单因素实验 |
| 2.5.2 正交试验 |
| 2.6 复合酶法辅助浸提蓝靛果多糖工艺的研究 |
| 2.6.1 工艺流程 |
| 2.6.2 复合酶的配比 |
| 2.6.3 单因素实验 |
| 2.6.4 正交试验 |
| 2.7 超声辅助提取蓝靛果多糖的工艺研究 |
| 2.7.1 工艺流程 |
| 2.7.2 单因素实验 |
| 2.7.3 响应曲面试验 |
| 2.8 结果与分析 |
| 2.8.1 基本成份测定结果 |
| 2.8.2 标准曲线的绘制结果 |
| 2.8.3 热水浸提蓝靛果多糖的结果分析 |
| 2.8.4 复合酶法辅助浸提蓝靛果多糖的结果分析 |
| 2.8.5 超声辅助浸提蓝靛果多糖的结果分析 |
| 2.8.6 三种提取方法的比较 |
| 2.9 本章小结 |
| 3 蓝靛果多糖分离纯化 |
| 3.1 引言 |
| 3.2 材料与方法 |
| 3.2.1 实验材料、仪器与试剂 |
| 3.2.2 多糖纯化路线 |
| 3.2.3 活性炭脱色的研究 |
| 3.2.4 乙醇体积分数对多糖醇沉效果的影响 |
| 3.2.5 DEAE Sepharose Fast Flow柱层析分离 |
| 3.2.6 Sephadex G-100柱层析分离 |
| 3.2.7 蓝靛果多糖分子量的测定 |
| 3.2.8 蓝靛果多糖单糖组成的测定 |
| 3.3 结果与分析 |
| 3.3.1 活性炭对蓝靛果多糖脱色的结果分析 |
| 3.3.2 乙醇体积分数对多糖醇沉效果的结果分析 |
| 3.3.3 DEAE Sepharose Fast Flow柱层析分离分析 |
| 3.3.4 Sephadex G-100柱层析分离分析 |
| 3.3.5 分子量的测定 |
| 3.3.6 单糖组成分析 |
| 3.4 本章小结 |
| 4 蓝靛果多糖体外抗糖基化的功能评价 |
| 4.1 引言 |
| 4.2 材料与方法 |
| 4.2.1 实验材料、仪器与试剂 |
| 4.2.2 蓝靛果多糖对体外糖基化抑制效果的研究 |
| 4.2.3 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 |
| 4.2.4 醛糖还原酶活性的测定 |
| 4.3 结果与分析 |
| 4.3.1 蓝靛果多糖对体外糖基化抑制效果的结果分析 |
| 4.3.2 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分析 |
| 4.3.3 蓝靛果多糖对醛糖还原酶的抑制作用分析 |
| 4.4 本章小结 |
| 结论 |
| 参考文献 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 |
| 致谢 |
（5）南瓜多糖缓释微胶囊的制备（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 文献综述 |
| 1.1 南瓜产业化的研究现状 |
| 1.2 多糖的研究 |
| 1.2.1 多糖的分类 |
| 1.2.2 多糖物质提取方法的研究 |
| 1.2.3 多糖纯化的方法 |
| 1.2.4 多糖的结构 |
| 1.2.5 多糖的理化性质 |
| 1.2.6 多糖的生理功能 |
| 1.3 微胶囊技术的研究现状 |
| 1.3.1 微囊化的作用 |
| 1.3.2 微囊化方法 |
| 1.3.3 壁材的选择 |
| 1.4 壳聚糖/海藻酸钠微胶囊的研究状况 |
| 1.4.1 壳聚糖和海藻酸钠微胶囊的制备方法 |
| 1.4.2 影响微胶囊性能的因素 |
| 1.4.3 微胶囊技术的应用 |
| 1.5 选题的目的意义及研究内容 |
| 第二章 冷冻-超声波提取南瓜多糖工艺优化 |
| 2.1 材料与方法 |
| 2.1.1 材料、试剂与仪器 |
| 2.1.2 试验方法 |
| 2.2 结果与分析 |
| 2.2.1 冷冻处理条件的选择 |
| 2.2.2 单因素试验结果 |
| 2.2.3 正交试验结果分析 |
| 2.2.4 验证试验 |
| 2.3 不同提取方法提取南瓜多糖的比较 |
| 2.4 小结 |
| 第三章 南瓜多糖的纯化与初步鉴定 |
| 3.1 材料与方法 |
| 3.1.1 主要材料与试剂 |
| 3.1.2 试验方法 |
| 3.2 结果与分析 |
| 3.2.1 脱除蛋白质结果分析 |
| 3.2.2 透析结果 |
| 3.2.3 南瓜多糖的纯度检测 |
| 3.2.4 南瓜多糖物理鉴定结果 |
| 3.2.5 南瓜多糖对α-葡萄糖苷酶抑制活性检测 |
| 3.3 小结 |
| 第四章 南瓜多糖复合胶囊的制备及其缓释性能 |
| 4.1 材料与方法 |
| 4.1.1 仪器和试剂 |
| 4.1.2 试验方法 |
| 4.2 结果与分析 |
| 4.2.1 试验方法的选择 |
| 4.2.2 单因素试验 |
| 4.2.3 正交试验 |
| 4.2.4 验证试验 |
| 4.2.5 体外释放结果分析 |
| 4.3 小结 |
| 第五章 结论与展望 |
| 5.1 结论 |
| 5.1.1 本文研究结论 |
| 5.1.2 创新点 |
| 5.2 展望 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 作者简介 |
（6）普鲁兰多糖提取工艺优化及其应用研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 1 前言 |
| 1.1 普鲁兰多糖简介 |
| 1.1.1 普鲁兰多糖性质 |
| 1.1.2 普鲁兰多糖的应用 |
| 1.2 普鲁兰多糖上游技术研究进展 |
| 1.3 普鲁兰多糖下游提取技术研究进展 |
| 1.3.1 下游提取除菌技术 |
| 1.3.2 下游提取脱色技术 |
| 1.3.3 下游提取脱蛋白技术 |
| 1.3.4 下游提取膜分离技术 |
| 1.4 多糖类分析方法 |
| 1.4.1 凝胶色谱 |
| 1.4.2 红外光谱 |
| 1.4.3 核磁共振光谱 |
| 1.4.4 扫描电子显微镜 |
| 1.5 可食用膜 |
| 1.5.1 可食用膜简介 |
| 1.5.2 普鲁兰多糖、壳聚糖膜研究现状 |
| 1.6 论文研究意义与目的 |
| 1.7 论文研究内容 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 实验材料与仪器 |
| 2.1.1 实验原料 |
| 2.1.2 实验仪器与设备 |
| 2.1.3 实验试剂 |
| 2.2 分析测定方法 |
| 2.2.1 粗多糖含量和粗多糖得率的测定 |
| 2.2.2 菌体去除率的测定 |
| 2.2.3 氮含量、蛋白质含量和蛋白质去除率的测定 |
| 2.2.4 脱色率的测定 |
| 2.2.5 膜通量的测定 |
| 2.2.6 离子去除率的测定 |
| 2.2.7 固体普鲁兰多糖含量的测定 |
| 2.2.8 普鲁兰多糖分子量的测定 |
| 2.2.9 固体普鲁兰多糖红外光谱的分析 |
| 2.2.10 固体普鲁兰多糖核磁共振扫描分析 |
| 2.2.11 固体普鲁兰多糖紫外吸收光谱扫描分析 |
| 2.2.12 固体普鲁兰多糖刚果红实验 |
| 2.2.13 固体普鲁兰多糖中粘度、PH、水分含量的测定 |
| 2.2.14 固体普鲁兰多糖中灰分的测定 |
| 2.2.15 固体普鲁兰多糖中单糖、二糖及寡糖的测定 |
| 2.2.16 颜色的测定 |
| 2.2.17 固体普鲁兰多糖溶解度的测定 |
| 2.2.18 扫描电镜分析 |
| 2.2.19 吸湿性的测定 |
| 2.2.20 保湿性的测定 |
| 2.2.21 可食用膜厚度的测定 |
| 2.2.22 可食用膜抗拉伸强度的测定 |
| 2.2.23 可食用膜断裂延伸率的测定 |
| 2.2.24 可食用膜水蒸气透过系数的测定 |
| 2.2.25 可食用膜阻氧性的测定 |
| 2.2.26 可食用膜水溶性的测定 |
| 2.2.27 可食用膜透明度的测定 |
| 2.2.28 可食用膜红外光谱分析 |
| 2.3 实验内容 |
| 2.3.1 普鲁兰多糖提取工艺流程 |
| 2.3.2 板框过滤除菌实验 |
| 2.3.3 脱蛋白实验 |
| 2.3.4 脱色实验 |
| 2.3.5 超滤膜分离实验 |
| 2.3.6 浓缩 |
| 2.3.7 干燥 |
| 2.3.8 普鲁兰多糖指标及结构测定 |
| 2.3.9 普鲁兰多糖吸湿、保湿性能的测定 |
| 2.3.10 普鲁兰多糖黏度稳定性的测定 |
| 2.3.11 可食用复合膜的应用 |
| 2.3.12 统计分析 |
| 3 结果与讨论 |
| 3.1 板框过滤除菌实验 |
| 3.1.1 滤布孔径对板框过滤除菌效果的影响 |
| 3.1.2 硅藻土添加量对板框过滤除菌效果的影响 |
| 3.1.3 发酵液中普鲁兰多糖的浓度对板框过滤除菌效果的影响 |
| 3.1.4 正交实验确定板框过滤除菌实验因素 |
| 3.1.5 正交验证实验 |
| 3.1.6 小结 |
| 3.2 脱蛋白实验 |
| 3.3 脱色实验 |
| 3.3.1 活性炭脱色实验 |
| 3.3.2 双氧水脱色试验 |
| 3.3.3 脱色方法的确定 |
| 3.4 超滤膜分离实验 |
| 3.5 浓缩、干燥 |
| 3.6 普鲁兰多糖指标及结构测定 |
| 3.6.1 普鲁兰多糖指标测定 |
| 3.6.2 普鲁兰多糖结构测定 |
| 3.6.3 小结 |
| 3.7 普鲁兰多糖的吸湿保湿及黏度特性 |
| 3.7.1 普鲁兰多糖的吸湿性、保湿性 |
| 3.7.2 普鲁兰多糖的吸湿动力学 |
| 3.7.3 不同黏度普鲁兰多糖的保湿 |
| 3.7.4 普鲁兰多糖黏度稳定性 |
| 3.7.5 小结 |
| 3.8 可食用复合膜的应用 |
| 3.8.1 可食用膜的机械性质 |
| 3.8.2 可食用膜的水蒸气透过系数 |
| 3.8.3 可食用膜的阻氧性 |
| 3.8.4 可食用膜的水溶性 |
| 3.8.5 可食用膜的颜色和透明度 |
| 3.8.6 可食用膜的红外光谱分析 |
| 3.8.7 可食用膜的扫描电镜分析 |
| 3.8.8 小结 |
| 4 结论 |
| 5 展望 |
| 6 参考文献 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 |
| 8 致谢 |
（7）木瓜多糖的提取工艺优化及其抗氧化活性研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第1章 前言 |
| 1.1 研究背景 |
| 1.1.1 木瓜的研究现状 |
| 1.1.2 木瓜多糖的概述 |
| 1.2 多糖提取方法研究进展 |
| 1.2.1 水提醇沉法 |
| 1.2.2 超滤法 |
| 1.2.3 超声波辅助提取法 |
| 1.2.4 高压脉冲电场法 |
| 1.2.5 酶法 |
| 1.3 脱色技术研究 |
| 1.3.1 化学脱色技术 |
| 1.3.2 吸附脱色技术 |
| 1.3.3 生物脱色技术 |
| 1.3.4 新型脱色技术 |
| 1.4 冷电弧-光催化-吸附集成技术 |
| 1.4.1 冷电弧 |
| 1.4.2 光催化 |
| 1.4.3 冷电弧-光催化-吸附集成技术 |
| 1.5 植物多糖抗氧化研究 |
| 1.6 课题研究意义和创新的 |
| 1.6.1 研究意义 |
| 1.6.2 课题创新点 |
| 第2章 材料与方法 |
| 2.1 仪器设备与材料试剂 |
| 2.1.1 仪器设备 |
| 2.1.2 实验材料与试剂 |
| 2.2 冷电弧-光催化-吸附集成装置的设计与制作 |
| 2.2.1 冷电弧-光催化-吸附集成装置的设计 |
| 2.2.2 冷电弧-光催化-吸附集成装置的制作 |
| 2.3 实验方法 |
| 2.3.1 实验流程 |
| 2.4 木瓜多糖的提取 |
| 2.4.1 木瓜多糖得率的计算 |
| 2.4.2 木瓜多糖脱色率的测定 |
| 2.4.3 木瓜多糖保留率的测定 |
| 2.5 木瓜多糖的脱色 |
| 2.5.1 光催化剂TiO_2的制备及固定化 |
| 2.5.2 光催化剂TiO_2粒径的测定 |
| 2.5.3 木瓜多糖的脱色工艺流程 |
| 2.6 木瓜多糖的纯化 |
| 2.6.1 醇沉沉淀 |
| 2.6.2 脱蛋白 |
| 2.6.3 透析 |
| 2.6.4 木瓜多糖的鉴定 |
| 2.7 木瓜多糖的抗氧化活性测定 |
| 2.7.1 清除羟基自由基(·OH)能力的测定 |
| 2.7.2 清除超氧阴离子(·O_2~-)能力的测定 |
| 2.7.3 还原力的测定 |
| 第3章 结果与讨论 |
| 3.1 木瓜多糖的提取 |
| 3.1.1 超声波处理时间对木瓜粗多糖得率的影响 |
| 3.1.2 液固比对木瓜多粗多糖得率的影响 |
| 3.1.3 浸提温度对木瓜粗多糖得率的影响 |
| 3.1.4 浸提时间对木瓜粗多糖得率的影响 |
| 3.1.5 木瓜多糖提取工艺的优化 |
| 3.1.6 小结 |
| 3.2 木瓜多糖的冷电弧-光催化-吸附脱色 |
| 3.2.1 不同工艺制备所得TiO_2光催化剂的粒径 |
| 3.2.2 光催化剂的重复利用次数 |
| 3.2.3 脱色时间对木瓜粗多糖脱色效果的影响 |
| 3.2.4 施加电压对木瓜粗多糖脱色效果的影响 |
| 3.2.5 活性炭填充率对木瓜粗多糖脱色效果的影响 |
| 3.2.6 木瓜粗多糖初始浓度对其脱色效果的影响 |
| 3.2.7 流速对木瓜粗多糖脱色率的影响 |
| 3.2.8 木瓜多糖脱色工艺优化实验结果与分析 |
| 3.2.9 小结 |
| 3.3 木瓜多糖的纯化及抗氧化能力测定 |
| 3.3.1 木瓜多糖的纯化及其抗氧化能力的变化 |
| 3.3.2 木瓜多糖的鉴定 |
| 3.3.3 木瓜多糖浓度对其清除羟基自由(·OH)基能力的影响 |
| 3.3.4 木瓜多糖浓度对其清除超氧阴离子(·O_2~-)能力的影响 |
| 3.3.5 木瓜多糖浓度对其还原能力的变化 |
| 3.3.6 小结 |
| 结论与展望 |
| 结论 |
| 展望 |
| 致谢 |
| 参考文献 |
| 附A 木瓜多糖提取工艺二次回归正交旋转组合表 |
| 附B 木瓜多糖脱色工艺二次回归正交旋转组合设计表 |
| 个人简历 |
（8）南瓜多糖提取工艺的优化及其抗氧化活性研究（论文提纲范文）
| 中文摘要 |
| 英文摘要 |
| 第1章 前言 |
| 1.1 研究背景 |
| 1.1.1 多糖概述 |
| 1.1.2 南瓜多糖简介 |
| 1.1.3 课题相关技术背景 |
| 1.2 多糖提取技术研究进展 |
| 1.2.1 水提醇沉法 |
| 1.2.2 酸、碱提取法 |
| 1.2.3 超声波提取法 |
| 1.2.4 微波提取法 |
| 1.2.5 超临界流体萃取法 |
| 1.2.6 酶解提取法 |
| 1.3 植物多糖提取过程中脱色技术的研究进展 |
| 1.3.1 氧化脱色 |
| 1.3.1.1 H_2O_2脱色 |
| 1.3.1.2 臭氧氧化脱色 |
| 1.3.2 吸附脱色 |
| 1.3.2.1 活性炭脱色 |
| 1.3.2.2 树脂吸附脱色 |
| 1.3.2.3 Al_3O_2吸附脱色 |
| 1.3.3 近年来发展的新型脱色技术 |
| 1.3.3.1 臭氧-超声波组合脱色技术 |
| 1.3.3.2 冷电弧-光催化脱色技术 |
| 1.4 冷电弧技术简介 |
| 1.4.1 冷电弧概述 |
| 1.4.2 冷电弧技术的研究现状 |
| 1.5 光催化技术 |
| 1.5.1 光催化概述 |
| 1.5.2 冷电弧-光催化技术研究进展 |
| 1.5.3 冷电弧-光催化-吸附耦合技术 |
| 1.6 课题研究创新点和意义 |
| 1.6.1 课题研究创新点 |
| 1.6.2 课题研究的意义 |
| 第2章 材料与方法 |
| 2.1 仪器设备和试剂材料 |
| 2.1.1 仪器设备 |
| 2.1.2 实验材料与试剂 |
| 2.2 脱色装置的设计制作 |
| 2.2.1 冷电弧-光催化-吸附脱色装置的设计 |
| 2.2.2 脱色装置的制作流程 |
| 2.3 实验流程与实验方法 |
| 2.3.1 实验流程 |
| 2.3.2 南瓜多糖的提取实验因素的选择与实验条件的控制 |
| 2.3.3 葡萄糖标准曲线的制作 |
| 2.3.4 总糖浓度与还原糖浓度的测定 |
| 2.3.5 南瓜多糖得率的测定 |
| 2.3.6 南瓜多糖粗提液脱色实验因素的选择与实验条件的控制 |
| 2.3.7 南瓜多糖溶液脱色实验流程 |
| 2.3.8 光催化剂TiO_2在活性炭颗粒上的负载 |
| 2.3.9 南瓜多糖提取液脱色率的测定 |
| 2.3.10 南瓜多糖提取液多糖保留率的测定 |
| 2.3.11 南瓜多糖抗氧化性的测定方法 |
| 2.3.11.1 南瓜多糖清除羟基自由基(·OH)能力的测定 |
| 2.3.11.2 南瓜多糖清除超氧阴离子(O_2~-·)能力的测定 |
| 2.3.11.3 南瓜多糖还原力的测定 |
| 2.3.11.4 南瓜多糖螯合金属能力的测定 |
| 2.3.12 数据分析与处理 |
| 第3章 结果与讨论 |
| 3.1 蒽酮-硫酸法葡糖糖标准曲线的制作 |
| 3.2 DNS法葡萄糖标准曲线的制作 |
| 3.3 超声波辅助热水浸提南瓜多糖的工艺技术研究 |
| 3.3.1 水浴浸提时间对提取效果的影响 |
| 3.3.2 水浴浸提温度对提取效果的影响 |
| 3.3.3 液固比对提取效果的影响 |
| 3.3.4 超声波处理时间对提取效果的影响 |
| 3.3.5 二次回归正交旋转组合设计优化提取工艺条件 |
| 3.3.5.1 二次回归正交旋转组合设计 |
| 3.3.5.2 二次回归正交旋转组合设计结构矩阵及计算 |
| 3.3.6 小结 |
| 3.4 双指标实验设计指标权重影响的讨论 |
| 3.5 冷电弧-光催化-吸附集成脱色技术的研究 |
| 3.5.1 多糖溶液进入装置的流速对脱色效果的影响 |
| 3.5.2 脱色处理时间对脱色效果的影响 |
| 3.5.3 脱色处理电压对脱色效果的影响 |
| 3.5.4 活性炭在脱色装置中的填充率对脱色效果的影响 |
| 3.5.5 二次回归正交旋转组合设计优化脱色工艺条件 |
| 3.5.5.1 二次回归正交旋转组合设计 |
| 3.5.5.2 二次回归正交旋转组合设计结构矩阵及计算 |
| 3.5.5.3 回归方程及回归系数的检验 |
| 3.5.5.4 零水平重复实验 |
| 3.5.5.5 最佳脱色工艺条件的确定 |
| 3.5.6 冷电弧-光催化-吸附技术脱色机理分析 |
| 3.6 小结 |
| 3.7 南瓜多糖氧化性的研究 |
| 3.6.1 南瓜多糖清除羟基(·OH)自由基能力的测定 |
| 3.6.2 南瓜多糖清除超氧阴离子(O_2~-··)能力的测定 |
| 3.6.3 南瓜多糖还原力的测定 |
| 3.6.4 南瓜多糖螯合金属离子能力的测定 |
| 3.6.5 植物多糖抗氧化机理的探讨 |
| 3.6.6 小结 |
| 结论与展望 |
| 结论 |
| 展望 |
| 致谢 |
| 参考文献 |
| 附录A 表南瓜多糖提取工艺二次回归正交旋转组合表 |
| 附录B 南瓜多糖脱色工艺二次回归正交旋转组合设计表 |
| 附录C 双指标综合指标得分与各指标不同权重系数r之间的关系讨论 |
| C-1 脱色率权重占100% |
| C-2 脱色率权重80%多糖保留率权重20% |
| C-3 脱色权重60%多糖保留率40% |
| C-4 脱色权重占20%多糖保留率占80% |
| C-5 权重系数r和回归方程系数之间的相关性讨论 |
| 个人简历 |
（9）基于枣酒生产的大枣多糖提取工艺研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 1 综述 |
| 1.1 大枣资源及其化学成分 |
| 1.2 大枣的营养价值及药用价值 |
| 1.3 多糖的国内外研究现状 |
| 1.3.1 多糖的研究进展 |
| 1.3.2 多糖的生物活性 |
| 1.3.3 多糖的提取方法 |
| 1.4 大枣多糖的药理研究及其应用前景 |
| 1.5 枣酒的生产研究 |
| 1.6 基于枣酒生产的大枣多糖提取工艺流程 |
| 1.7 本课题的研究目的、研究内容及创新点 |
| 1.7.1 本课题的研究目的和意义 |
| 1.7.2 本课题研究的主要内容 |
| 1.7.3 本课题研究的创新点 |
| 2 大枣多糖的提取工艺研究 |
| 2.1 实验试剂及仪器 |
| 2.1.1 主要试剂 |
| 2.1.2 主要仪器 |
| 2.2 实验方法 |
| 2.2.1 大枣含水量的测定 |
| 2.2.2 多糖的测定 |
| 2.2.3 多糖提取率的计算 |
| 2.2.4 大枣多糖提取工艺路线 |
| 2.2.5 果胶酶提取试验 |
| 2.3 结果与分析 |
| 2.3.1 大枣含水量 |
| 2.3.2 葡萄糖浓度标准曲线 |
| 2.3.3 时间对 Lafazyme CL 提取多糖的影响 |
| 2.3.4 果胶酶加量对多糖提取率的影响 |
| 2.3.5 时间对多糖提取率的影响 |
| 2.3.6 温度对多糖提取率的影响 |
| 2.4 响应面试验 |
| 2.4.1 响应面分析 |
| 2.4.2 响应面法优化果胶酶提取大枣多糖的工艺 |
| 2.5 小结 |
| 3 大枣多糖脱蛋白的工艺研究 |
| 3.1 多糖脱蛋白的方法 |
| 3.2 实验试剂及仪器 |
| 3.2.1 主要试剂 |
| 3.2.2 主要仪器 |
| 3.3 实验方法 |
| 3.3.1 大枣多糖脱蛋白工艺路线 |
| 3.3.2 蛋白质的测定 |
| 3.3.3 蛋白质去除率的计算 |
| 3.4 结果与分析 |
| 3.4.1 蛋白质标准曲线 |
| 3.4.2 蛋白酶的选择试验 |
| 3.4.3 酸性蛋白酶单因素试验 |
| 3.4.4 响应面试验 |
| 3.5 小结 |
| 4 大枣多糖脱色的工艺研究 |
| 4.1 多糖脱色的方法 |
| 4.2 试验试剂及仪器 |
| 4.2.1 主要试剂 |
| 4.2.2 主要仪器 |
| 4.3 实验方法 |
| 4.3.0 脱色率的测定 |
| 4.3.1 树脂的预处理 |
| 4.3.2 树脂的筛选 |
| 4.4 结果与分析 |
| 4.4.1 不同树脂对大枣多糖的脱色效果 |
| 4.4.2 LSA-900E 静态吸附试验 |
| 4.4.3 树脂的再生 |
| 4.5 小结 |
| 5 结论与展望 |
| 5.1 结论 |
| 5.2 展望 |
| 致谢 |
| 参考文献 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 |
（10）攀枝花块菌多糖的提取、纯化及抗氧化活性研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第一章 绪论 |
| 1 块菌概述 |
| 1.1 块菌简介 |
| 1.2 块菌的研究概况 |
| 1.2.1 块菌人工栽培技术研究 |
| 1.2.2 块菌的营养价值研究 |
| 1.2.3 块菌的芳香性成分研究 |
| 1.2.4 块菌的分子生物学研究 |
| 2 多糖概述 |
| 2.1 多糖的定义及分类 |
| 2.1.1 多糖的定义 |
| 2.1.2 多糖的分类 |
| 2.1.3 块菌多糖 |
| 2.2 多糖研究的常用方法 |
| 2.2.1 多糖的提取 |
| 2.2.2 多糖的纯化 |
| 2.2.3 多糖的分级 |
| 2.3 多糖的生物活性研究 |
| 2.3.1 多糖的免疫调节作用 |
| 2.3.2 多糖的抗病毒活性 |
| 2.3.3 多糖的抗肿瘤作用 |
| 2.3.4 多糖的抗氧化活性 |
| 2.3.5 其它的生物活性作用 |
| 2.4 多糖研究的现状及展望 |
| 3 立题依据与研究内容 |
| 3.1 立题依据与研究意义 |
| 3.2 主要研究内容 |
| 第二章 块菌多糖的提取工艺研究 |
| 1 材料、试剂及仪器 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 试剂 |
| 1.3 仪器与设备 |
| 2 实验方法 |
| 2.1 多糖的测定方法 |
| 2.1.1 葡萄糖标准曲线的绘制 |
| 2.1.2 多糖含量的测定 |
| 2.2 原料预处理 |
| 2.3 块菌多糖提取工艺流程 |
| 2.4 块菌多糖的传统热水浸提法工艺条件研究 |
| 2.4.1 热水浸提法工艺条件单因素试验 |
| 2.4.2 Box-Behnken中心组合设计试验 |
| 2.5 块菌多糖的酶法辅助提取工艺条件研究 |
| 2.5.1 酶法辅助提取工艺条件单因素试验 |
| 2.5.2 Box-Behnken中心组合设计试验 |
| 2.6 块菌多糖的超声波辅助提取工艺条件研究 |
| 2.6.1 单因素试验 |
| 2.6.2 Box-Behnken中心组合设计试验 |
| 2.7 块菌多糖的超声波协同酶法提取工艺条件研究 |
| 2.7.1 单因素试验 |
| 2.7.2 Box-Behnken中心组合设计试验 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 多糖含量的测定 |
| 3.1.1 测定葡萄糖含量标准曲线 |
| 3.1.2 块菌多糖提取率及含量计算 |
| 3.2 热水浸提法提取块菌多糖的工艺研究 |
| 3.2.1 提取时间的影响 |
| 3.2.2 提取温度的影响 |
| 3.2.3 液料比的影响 |
| 3.2.4 热水浸提法提取块菌多糖的工艺条件优化 |
| 3.2.5 热水浸提法提取块菌多糖的工艺条件验证试验 |
| 3.3 酶法辅助提取块菌多糖的工艺研究 |
| 3.3.1 酶种类的筛选 |
| 3.3.2 酶解温度的影响 |
| 3.3.3 pH值的影响 |
| 3.3.4 酶解时间的影响 |
| 3.3.5 酶用量的影响 |
| 3.3.6 液料比的影响 |
| 3.3.7 酶法辅助提取块菌多糖的工艺条件优化 |
| 3.3.8 块菌多糖的酶法辅助提取工艺条件验证试验 |
| 3.4 超声波辅助提取块菌多糖的工艺研究 |
| 3.4.1 超声波温度的影响 |
| 3.4.2 超声波功率的影响 |
| 3.4.3 超声波时间的影响 |
| 3.4.4 液料比的影响 |
| 3.4.5 超声波辅助提取块菌多糖的工艺条件优化 |
| 3.4.6 超声辅助提取块菌多糖的工艺条件验证试验 |
| 3.5 超声波协同酶法提取块菌多糖的工艺研究 |
| 3.5.1 方法筛选 |
| 3.5.2 超声时间的影响 |
| 3.5.3 超声温度的影响 |
| 3.5.4 超声功率的影响 |
| 3.5.5 酶解时间的影响 |
| 3.5.6 酶解pH值的影响 |
| 3.5.7 酶解温度的影响 |
| 3.5.8 超声波协同酶法提取块菌多糖的工艺条件优化 |
| 3.5.9 超声波协同酶法提取块菌多糖的工艺条件验证试验 |
| 4 结论与讨论 |
| 第三章 块菌多糖的分离纯化工艺研究 |
| 1 材料、试剂及仪器 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 试剂 |
| 1.3 主要仪器与设备 |
| 2 试验方法 |
| 2.1 块菌多糖脱蛋白研究 |
| 2.1.1 多糖中蛋白质含量的测定 |
| 2.1.2 不同的脱蛋白方法 |
| 2.1.3 块菌多糖脱蛋白工艺条件研究 |
| 2.2 块菌多糖脱色研究 |
| 2.2.1 块菌多糖中色素的测定 |
| 2.2.2 不同的脱色处理 |
| 2.2.3 块菌多糖脱色工艺条件研究 |
| 2.3 块菌多糖透析除杂 |
| 2.4 块菌多糖超滤法分级 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 块菌多糖的脱蛋白研究 |
| 3.1.1 块菌多糖中蛋白质的测定结果 |
| 3.1.2 不同脱蛋白方法的比较 |
| 3.1.3 块菌多糖的酶+Sevage法脱蛋白工艺条件优化 |
| 3.1.4 块菌多糖脱蛋白工艺条件验证试验 |
| 3.2 块菌多糖的脱色研究 |
| 3.2.1 不同脱色处理的比较 |
| 3.2.2 块菌多糖脱色工艺条件优化 |
| 3.2.3 块菌多糖脱色工艺条件验证试验 |
| 3.3 块菌多糖超滤分离的结果 |
| 4 结论与讨论 |
| 第四章 块菌多糖的体外抗氧化活性研究 |
| 1 材料、试剂及仪器 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 试剂 |
| 1.3 主要仪器 |
| 2 试验方法 |
| 2.1 块菌多糖总还原能力测定 |
| 2.2 清除有机自由基(DPPH·)活性的测定 |
| 2.3 清除羟自由基(·OH)能力的测定 |
| 2.4 清除超氧阴离子(O_2·)能力的测定 |
| 2.5 螯合金属离子能力的测定 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 块菌多糖总还原能力的测定结果 |
| 3.2 对有机自由基(DPPH·)的清除作用 |
| 3.3 对羟自由基(·OH)的清除作用 |
| 3.4 对超氧阴离子(O_2~-·)的清除作用 |
| 3.5 螯合金属离子能力的测定结果 |
| 4 结论与讨论 |
| 结论与展望 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 |
四、活性炭对南瓜粗多糖液的脱色研究（论文参考文献）
- [1]南瓜多糖提取分离条件的优化[J]. 王志高,罗红宇. 农村经济与科技, 2020(01)
- [2]神农香菊茎多糖提取、纯化、结构和抗氧化活性研究[D]. 章慧. 武汉轻工大学, 2019(01)
- [3]榛子壳多糖提取与生物活性研究及生产车间初步设计[D]. 陈明星. 哈尔滨工业大学, 2019(02)
- [4]蓝靛果多糖提取纯化及其抗糖基化的功能评价[D]. 张家成. 哈尔滨商业大学, 2018(06)
- [5]南瓜多糖缓释微胶囊的制备[D]. 安召阳. 西北农林科技大学, 2016(09)
- [6]普鲁兰多糖提取工艺优化及其应用研究[D]. 孙芳艳. 天津科技大学, 2016(06)
- [7]木瓜多糖的提取工艺优化及其抗氧化活性研究[D]. 谢勇. 福州大学, 2014(10)
- [8]南瓜多糖提取工艺的优化及其抗氧化活性研究[D]. 王中星. 福州大学, 2013(10)
- [9]基于枣酒生产的大枣多糖提取工艺研究[D]. 闫明明. 陕西科技大学, 2013(S2)
- [10]攀枝花块菌多糖的提取、纯化及抗氧化活性研究[D]. 岳金玫. 四川农业大学, 2012(06)
标签：南瓜论文; 多糖论文; 粗多糖论文; 南瓜的功效与作用论文; 普鲁兰多糖论文;