一、芍药不定芽的诱导技术（论文文献综述）
张滕[1]（2019）在《基于成熟胚和地下芽的芍药离体再生体系建立与优化》文中研究表明芍药（Paeonia lactiflora Pall.）隶属芍药科芍药属,是国内外着名的观赏植物,极具商业价值。然而,现代商品花卉广泛使用的组织培养技术尚未被成功应用在芍药属植物上,这不仅限制了芍药的规模化生产,也使分子生物学方面的研究难以开展。本研究通过对芍药成熟合子胚和地下芽离体培养的优化,为芍药组培快繁体系的建立提供了技术支持;同时,应用组织切片技术追踪不定根的发生规律,揭示发生机理,为解决芍药生根难题提供理论依据。此外,本研究对体细胞胚间接诱导途径进行了探索,尝试通过诱导胚性愈伤组织的发生解决愈伤组织再分化难题。主要结果如下:1、WPM培养基是’杭白芍’合子胚离体培养的最适基本培养基,1/2MS（Ca2+加倍）是’粉玉奴’的最适基本培养基。二者在启动和增殖培养阶段的最佳激素配比为6-BA 1.0 mg·L-1+GA3 0.5 mg·L-1。’杭白芍’组培苗的继代次数应控制在4次以内,最佳生根培养基为1/2MS（Ca2+加倍）+IBA 1.0 mg·L-1+腐胺0.5 mg·L-1。2、5个切花芍药品种中,’Karl Rosenfield’污染率最低,最适宜进行丛生芽诱导。1/2MS（Ca2+加倍）+0.5 mg·L-1 6-BA+0.2 mg·L-1KT 是最佳增殖培养基,’Karl Rosenfield’在该培养基的增殖系数为6.08,且基本无褐化和玻璃化发生。生根阶段,株高≥ 3cm、叶片数较多的Ⅲ级苗生根效果最好,植物生长调节剂以单独添加1.0 mg·L-1 IBA的1/2MS培养基效果最好。3、芍药不定根的发生需要植物生长调节剂的诱导,属于诱导生根类型。不定根多位点和不同步的发生方式是芍药生根难的重要原因。芍药组培苗接种到生根培养基后,茎部的维管束处和分裂分化旺盛的愈伤组织处会逐渐形成排列紧密、呈团状的根原基原始细胞,根原基原始细胞分裂分化形成圆球形的根原基,并不断向表皮生长,最后突破表皮伸出形成不定根。4、胚性愈伤组织的诱导效率由高到低依次为:合子胚>子叶>胚轴。NAA和TDZ配合使用有利于胚性愈伤组织的诱导,当激素组合为NAA 0.5 mg.L-1+TDZ 1.0 mg·L-1 或 NAA 0.5 mg·L-1+TDZ 0.5 mg·L-1,成熟的’杭白芍’合子胚可诱导出疏松、黄绿色且表面颗粒状的胚性愈伤组织。子叶和下胚轴的预培养时间不宜过长,以40d之内为宜。子叶诱导愈伤组织的最佳激素组合为MS+2,4-D 2.0 mg·L-1+TDZ 0.2 mg·L-1+CH 300 mg·L-1;下胚轴诱导愈伤组织的最佳激素组合为MS+2,4-D 2.0 mg·L-1+NAA 0.5 mg·L-1+TDZ 0.2 mg·L-1。
姚希诺[2]（2018）在《芍药再生体系的建立》文中指出芍药（Paeonia lactiflora Pall.）为芍药属芍药组全缘叶亚组的多年生宿根草本植物,集观赏价值、药用价值和经济价值于一身,也是园林造景中不可缺少的草本花卉。芍药区别于其他草本植物具有复杂的休眠特性,因而制约了芍药的增殖生长。区别于其他草本植物,芍药具有繁殖系数低、繁殖周期长等缺点,因此还没有建立起完整高效的再生体系。本研究以粉玉奴为母本粉玉楼为父本的杂交种子为研究对象,通过三种不同的再生途径对芍药的再生体系进行构建和探讨。研究主要结果如下:1.芍药最适胚启动培养基为MS+6-BA 1.0mg/L+GA3 0.5mg/L,种胚萌发率均在90%以上,相较于自然条件下的40%的萌发率具有明显优势;对分裂素KT进行筛选确定最适胚成苗培养基为MS+KT 1.0mg/L+GA3 0.5mg/L,诱导率为49.82%。2.芍药诱导子叶节愈伤组织的最适培养基为1/2MS+NAA 0.5mg/L+TDZ0.2mg/L,诱导率最高为81.52%;诱导子叶节愈伤组织最佳增殖培养基为MS+2,4-D0.5mg/L+KT1mg/L,其增殖系数最高,最高为2.08,褐化率为21.73%。3.诱导芍药种胚丛生芽的最适培养基为MS+6-BA 1.0mg/L+GA3 0.5mg/L,培养60天后转接到Z2培养基MS+6-BA2.0mg/L+GA3 0.5mg/L+NAA0.2mg/L上进行丛生芽的增殖培养。子叶节丛生芽诱导培养基为MS+6-BA1.0mg/L+GA30.5mg/L+TDZ0.5mg/L,丛生芽的最适增殖生根培养基为1/2MS+NAA 0.2mg/L+IBA 1.0mg/L+PVP 1.0g/L,添加1.0g/L的PVP有利于减轻外植体的褐化程度。4.植物激素NAA浓度、6-BA浓度、KT浓度和CH浓度对芍药胚性愈伤组织转化率的影响均达到显着水平（P<0.05）,各因素的影响程度从大到小依次为CH、KT、6-BA、NAA,研究发现胚性愈伤组织转化的最佳培养基为MS+NAA 0.1mg/L+KT 2mg/L+6-BA0.5mg/L。
常婧[3]（2017）在《芍药组织培养研究进展》文中认为利用组织培养技术进行繁育是芍药商品化及产业化发展的必然趋势。本文从外植体选择与处理、培养基选择、植物调剂物质以及目前组培中存在的问题（主要是褐化和玻璃化）等方面,综述了芍药组织培养研究现状,并对今后的发展进行了展望,旨在为芍药的种质资源的保存以及新品种选育等研究提供参考。
魏冬霞[4]（2017）在《芍药体细胞胚诱导和愈伤组织再分化研究》文中研究表明芍药（Paeonia lactiforaPall.）是中国传统名花,提高繁殖效率是对其进行商品化、产业化生产的基本保障。但在组织培养方面,一直无法建立成熟的离体再生体系,严重制约了产业化发展的进程,也进一步制约了分子生物学的深入开展。本研究通过体细胞胚直接和间接发生途径、愈伤组织再分化途径进行芍药的植株再生研究;同时,还系统研究了芍药各类花器官的愈伤组织诱导情况,从而丰富可选择外植体种类;并以此为依托,对愈伤组织的褐化问题和更新培养展开探究,以保证愈伤组织的长期有效利用。主要结果如下:1、芍药体细胞胚间接发生研究:高浓度的2,4-D（2.0 mg/L）和连续的暗培养（90天）诱导胚性愈伤组织产生;胚性愈伤组织在1/2MS（Ca2+加倍）+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L的培养基中,见光培养60天,发育至圆球形胚、心形胚阶段。芍药的体细胞胚起源方式包括外起源和内起源两个途径。在外起源方式中包括单个表层细胞的外起源和多个表层下细胞的共同起源。胚性细胞的分裂方式为对称分裂,未发现不对称分裂细胞的存在。2、体细胞胚直接发生初探:6-BA的单独使用或是与2,4-D、NAA、TDZ、KT的联合使用,均不能诱导芍药合子胚直接产生体细胞胚;合子胚成苗培养结果显示,低浓度6-BA和GA3的1/2MS（Ca2+加倍）培养基促进芍药子叶中间抽出真叶;IBA和IAA的联合使用促使芍药小苗抽生出大量不定根;这其中杂种芍药1号（自育,未命名）相较于常规的二倍体品种’粉玉奴’,小苗长势明显旺盛。3、愈伤组织再分化研究:芍药地下芽的未伸展茎段为诱导愈伤组织再分化的理想材料;高浓度的ABA（1.0或1.5mg/L）协同低浓度的NAA、6-BA（低于0.5 mg/L）共同促进愈伤组织转化为预分化状态;及时降低生长调节剂的浓度,促进愈伤组织分化出白色或绿色棒状不定芽;无激素培养基促进白色不定芽生长为明显可见的气生根,绿色棒状不定芽顶端则逐渐出现缺口,分化出两片幼叶;经过低浓度的6-BA和2,4-D共同培养,小苗茎叶分化明显,叶片展开;但在常用IBA和IAA的生根配方中,不能促进小苗抽生不定根。4、花器官愈伤组织诱导研究:在各类花器官类型中,愈伤组织诱导表现排序为子房>胚珠>花瓣>花药>花丝;花瓣的基部相较于其他部位更利于愈伤组织的诱导;子房和胚珠的愈伤组织皆来源于子房内部胎座组织;雄蕊培养中,花药和花丝直接死亡,愈伤组织全来自花粉的有丝分裂。1.0 mg/LNAA+1.0 mg/L2,4-D适用于所有花器官愈伤组织的诱导;单独使用150 mg/L的VC有利于缓解愈伤组织褐化;在1/2MS（Ca2+加倍）培养基中添加低浓度的2,4-D、6-BA、TDZ适用于所有衰弱、老化愈伤组织的更新培养。
孙晓梅,程婉,刘萍,周文强,王丹,杨宏光[5]（2014）在《芍药愈伤组织诱导及不定芽分化的研究》文中研究表明为了对芍药再生体系建立进行探究,以芍药无菌苗子叶、茎、叶片为外植体,研究了影响芍药愈伤组织诱导的主要因素。结果表明:诱导愈伤组织较优的外植体为子叶;诱导愈伤组织和增殖的较优培养基为MS+6-BA0.5 mg·L-1+NAA1.0 mg·L-1+2,4-D1.0mg·L-1;芍药器官分化的直接途径优于愈伤组织分化的间接途径,TDZ1.0mg·L-1与NAA0.1 mg·L-1同时使用可提高不定芽的分化率,较优的分化外植体是基部茎。
邢小明[6]（2013）在《波叶红果树愈伤组织诱导及抗逆性研究》文中进行了进一步梳理本试验以波叶红果树（Stranvaesia davidiana var. undulata）无菌苗的离体叶片及不带芽茎段为外植体，探索了波叶红果树愈伤组织诱导、增殖与分化的最佳培养条件，并以3年生盆栽苗为试验材料，研究其耐荫性与抗旱性，为波叶红果树的养护管理提供理论依据。主要研究结果如下：1.在愈伤组织诱导试验中，通过研究不同植物生长调节剂及其组合、不同基本培养基、不同叶龄及不同光照条件对愈伤组织诱导的影响，其试验结果表明，叶片与不带芽茎段都能诱导出愈伤组织。MS为最佳基本培养基，暗培养21d再转至光下培养，愈伤组织生长状态较好。叶片诱导愈伤的最佳培养基为MS+TDZ1.0mg·L-1+2,4-D1.0mg·L-1，诱导率达100%；茎段诱导愈伤组织的最佳培养基为MS+KT0.5mg·L-1+2,4-D0.1mg·L-1，诱导率也为100%。在愈伤组织增殖试验中，初步探索了不同植物生长调节剂组合、光照条件、蔗糖浓度及活性碳浓度对愈伤组织增殖的影响，其试验结果表明，最佳的愈伤组织增殖培养基为MS+6-BA1.5mg·L-1+NAA1.0mg·L-1+2,4-D0.01mg·L-1，暗培养比光培养增殖倍数高，但两者之间无显着性差异。浓度为30g·L-1的蔗糖对愈伤组织增殖效果较好，添加活性炭不利于愈伤组织的增殖。在愈伤组织分化试验中，本文对不同植物生长调节剂组合对愈伤组织诱导不定芽的影响进行了研究，其结果表明，波叶红果树愈伤组织能够诱导出不定芽，其中在MS+6-BA3.0mg·L-1+KT0.1mg·L-1+NAA0.1mg·L-1培养基上诱导效果较好，但不定芽诱导率很低，仅为6.67%。2.本试验采用人工遮荫方法测定波叶红果树耐荫性，研究结果表明，波叶红果树具有一定耐荫性，在透光率为50%处理下也能生长良好，可以把光化学淬灭qP、潜在活性Fv/Fo、原初光能转化效率Fv/Fm、叶绿素b4个指标作为评判波叶红果树耐荫能力的重要指标。通过控水法研究波叶红果树的抗旱性，其研究结果表明，干旱胁迫28d时对波叶红果树造成严重伤害，对干旱胁迫反应敏感度从强到弱依次为POD、电导率、丙二醛、SOD。
康冬茹[7]（2013）在《芍药组织培养体系的研究》文中进行了进一步梳理芍药（Paeonia lactiflora Pall.）是我国着名观赏花卉，其组织培养体系的建立对芍药快繁和育种均具有重要意义。本研究以观赏芍药品种‘紫凤羽’、‘蝶落粉池’、‘遍地红’、‘大富贵’、及野生种川赤芍上采集的种子为试材，对打破种胚休眠和胚继续发育进行了系统研究；以‘粉盘藏珠’、‘奇花露霜’、‘丹凤’、‘鲁红’鳞芽为试材，探讨了消毒程序、褐化的抑制、鳞芽萌发、腋芽增殖、组培苗生根等，为芍药优良品种工厂化快繁提供了参考；以芍药不同无菌外植体进行愈伤组织诱导以及愈伤组织增殖培养，对外植体的愈伤组织诱导能力以及最佳培养基进行了探索研究。本研究通过种胚培养和鳞芽培养等构建了芍药的再生体系，还通过愈伤诱导获得了愈伤组织途径最佳外植体和培养基，有利于为芍药的工厂化快繁生产提供技术基础、为进一步的基因工程改良提供基础材料、为芍药新品种的培育提供良好平台。主要结果如下：（1）确定了不同外植体消毒程序外植体的适宜消毒方式因种类而异：种胚以10%次氯酸钠溶液处理15min；鳞芽采用2%次氯酸钠溶液处理10min；无菌子叶和叶片、根等进行愈伤组织诱导时，采用75%乙醇处理15s。（2）探讨了种胚萌发影响因素并筛选出种胚最佳萌发培养基种胚剥皮处理相对于保留种皮更加有利于种胚萌发；光照条件下发芽率要高于暗培养，光照对芍药种胚萌发有一定的促进作用；不同芍药品种的种胚萌发率存在差异性：所选4个品种的种胚萌发率以‘大富贵’最高，‘遍地红’次之，‘奇花露霜’和‘蝶落粉池’均较低。川赤芍上采集种子萌发率低于‘紫凤羽’，但初期长势优于‘紫凤羽’；川赤芍种胚最佳萌发培养基为：MS+GA31.0mg·L-1+6-BA2.0mg·L-1（NO.7）；‘紫凤羽’种胚最佳萌发培养基为：MS+GA32.0mg·L-1+6-BA0.5mg·L-1（NO.9）；种胚生根最佳培养基为MS+GA30.2mg·L-1（NO.15）。（3）建立了高效鳞芽快繁体系①初代培养中褐化问题的研究所采用的3种添加剂中，以PVP和AC对褐化的抑制作用较明显，PVP含量为0.5g·L-1时褐化率最低，为5.00%； AC对鳞芽萌发有一定的促进作用；此外，将外植体材料在抗坏血酸溶液中切割、接种前用无菌水长时间浸泡以及前期采用暗培养等措施，能够有效地降低褐化率。②芽增殖体系的研究以‘粉玉奴’鳞芽进行萌发诱导时，获得理想萌发情况；由于主侧芽对激素反应不同，偶见主芽和侧芽不同时萌动现象，因此将主侧芽分开培养。对‘粉盘藏珠’、‘奇花露霜’和‘丹凤’的侧芽进行萌发诱导，并对‘鲁红’主芽进行丛生芽诱导；各品种侧芽均获得理想萌发率（100%），‘鲁红’主芽在初代培养中即可在叶腋处获得芽再生，增殖率最高为3.17。‘粉玉奴’鳞芽（主侧芽未分离）最佳萌发培养基为：1/2MS+GA31.0mg·L-1+6-BA1.5mg·L-1+NAA0.0mg·L-1+AC1.0g·L-1（NO.34）；‘粉盘藏珠’侧芽最佳萌发培养基：1/2MS+GA31.5mg·L-1+6-BA1.0mg·L-1+AC1.0g·L-1（NO.47）；‘奇花露霜’侧芽最佳萌发培养基为：1/2MS+GA31.5mg·L-1+6-BA0.5mg·L-1+AC1.0g·L-1（NO.46）；‘丹凤’侧芽最佳萌发培养基为：1/2MS+GA31.5mg·L-1+6-BA1.5mg·L-1+AC1.0g·L-1（NO.48）。‘鲁红’最佳丛生芽诱导培养基为：1/2MS+GA32.0mg·L-1+6-BA1.5mg·L-1+AC1.0g·L-1（NO.52）。③生根方式和方法的研究对3月份已经萌动的‘丹凤’鳞芽进行直接生根探索，所采用纵向劈裂法和速蘸法均未获得生根；组培苗的生根较难，根数少而且没有二级根，所获得最佳生根培养基为1/2MS+IBA0.5mg·L-1（NO.53）；‘粉盘藏珠’、‘奇花露霜’部分侧芽在萌发培养基上，暴露在空气中的芽基部会有少根形成，推测无菌条件下芍药生根可能需要透气性好的培养条件。（4）获得了不同外植体诱导的愈伤组织以及增殖问题的探索以茎段、叶片、子叶和根为外植体进行愈伤组织的诱导，其中以叶片愈伤组织诱导率最高，子叶诱导的愈伤组织生长速度最快，茎段愈伤组织诱导率和活性均欠佳，根的培养并不能获得愈伤组织的发生。叶片和子叶的最佳愈伤诱导培养基均为：MS+6-BA2.0mg·L-1+NAA0.5mg·L-1（NO.66）；茎段的最佳愈伤诱导培养基为MS+6-BA1.0mg·L-1+NAA0.5mg·L-1（NO.60）。愈伤组织增殖中发生严重褐变,未取得理想增殖效果。
沈苗苗[8]（2013）在《观赏芍药胚培养及茎段愈伤组织诱导研究》文中指出芍药（Paeonia lactiflora Pall.）是中国的传统名花,观赏价值颇高。本论文分别从芍药胚培养和茎段愈伤组织诱导两个方面,主要研究了胚龄对芍药幼胚诱导的影响、胚诱导出幼苗、叶芽的诱导和增殖、壮苗生根、驯化移栽以及‘大富贵’、’Sorbet’’Coral Sunset ’、’Duchess de Nemours’和’ Sarah Bernhard’5个芍药品种的愈伤组织的诱导、增殖和分化等。实验结果如下：1.‘粉玉奴’、‘种生粉’和‘朱砂判’三个品种花后90d（成熟胚）的诱导效果最好。去除种皮和胚乳的胚是最好的外植体处理方式。2.诱导胚苗的最佳组合为6-BA0.5mg/L+GA31.0mg/L。3.最佳的叶芽增殖培养基为1/2MS （Ca2+加倍）+6-BA1.0mg/L+GA31.0mg/L。不添加任何激素的1／2MS培养基是胚苗壮根的最佳培养基。4.1／2MS是’Coral Sunset’、’Duchess de Nemours’、和’ Sarah Bernhard’3个品种茎段愈伤组织诱导的最适基本培养基；不同品种茎段愈伤组织诱导的最佳激素组合为：TDZ0.5mg/L+NAA0.5mg/L（’大富贵’、’Sorbet’和‘Sarah Bernhard’）、 TDZ0.5mg/L+2,4-D0.5mg/L （’Coral Sunset’和’ Duchess de Nemours’）。5.‘大富贵’的最佳激素组合为2,4-D0.5mg/L+TDZ0.5mg/L或2,4-D1.0mg/L+TDZ0.5mg/L+NAA0.5mg/L,’ Sorbet’为2,4-D1.0mg/L+TDZ0.5mg/L;’Coral Sunset’为’IDZ0.2mg/L+NAA0.2mg/L;’Duchess de Nemours’和‘Sarah Bernhard’分别为2,4-D1.0mg/L+TDZ0.5mg/L+NAA0.5mg/L和2,4-D1.0mg/L+TDZ0.5mg/L+NAA0.2mg/L。6.愈伤组织分化培养：‘大富贵’和’Sorbet’最佳愈伤组织分化培养基分别为WPM+NAA0.5mg/L+TDZ0.5mg/L和WPM+NAA0.5mg/L+TDZ0.2mg/L;黑暗培养有利于大富贵的不定芽的分化,并能有效抑制褐化和污染；适量的CH能促进愈伤组织的分化。’Coral Sunset’、’Duchess de Nemours’和’Sarah Bernhard’的最适宜的分化培养基分别为1/2MS（Ca2+加倍）+TDZ0.5mg/L+NAA0.5mg/L、 l/2MS（Ca2+加倍）+TDZ0.5mg/L+NAA0.5mg/L和1/2MS（Ca2+加倍）+TDZ0.1mg/L+NAA0.2mg/L,而液体培养方式对’Sarah Bernhard’的愈伤组织分化更有利。7.IBA为1.0mg/L最有利于’Coral Sunset’、Duchess de Nemours’和’Sarah Bernhard’不定根的分化,但最终未能诱导不定根的分化。8.延长培养周期和1／2MS培养基都能在一定程度上恢复褐化愈伤组织。
薛银芳,赵大球,周春华,陶俊[9]（2012）在《芍药组织培养的研究进展》文中进行了进一步梳理利用组织培养进行繁育是芍药商品化和产业化发展的必然趋势。现从外植体选择与处理、再生体系途径（愈伤组织途径、丛生芽途径、体细胞胚途径）、目前组培中存在的问题（主要是褐化和玻璃化）等方面,综述了芍药组织培养研究现状,并对今后的发展进行了展望,旨在为芍药的生产提供重要信息。
吴红娟[10]（2011）在《芍药品种地下芽诱导及愈伤组织培养研究》文中认为芍药（Peaonia lactiflora Pall.）具有极高的观赏价值和药用价值。本研究以5个芍药品种,‘团叶红’、‘种生粉’、‘粉玉奴’、‘大富贵’、‘朱砂判’为试材,对地下芽启动培养、丛生芽诱导与增殖、玻璃化的改善、越夏壮苗、生根培养、驯化移栽、愈伤组织诱导及分化进行了研究。实验结果如下：（1）启动培养中,5个芍药品种相比较,‘朱砂判’表现最好。IAA有利于芍药的启动培养。有利于‘朱砂判’的启动培养基为1/2 MS（Ca2+加倍）+6-BA1.0mg/L+GA30.5mg/L+IAA0.2mg/L。‘种生粉’最佳启动培养基为1/2MS（Ca2+加倍）+6-BA1.0mg/L+GA30.5mg/L+IAA0.1mg/L。春季3月份取材效果好于冬季。‘大富贵’启动培养应选择低浓度的6-BA（0.5mg/L）。（2）去除花芽和叶片有利于‘种生粉’丛生芽的诱导。‘大富贵’丛生芽诱导最佳处理为6-BA 1.0 mg/L+KT0.5 mg/L.‘朱砂判’增殖最佳处理为6-BA 1.0 mg/L+KT 0.5 mg/L+IAA 0.5 mg/L.‘种生粉’增殖最佳处理为6-BA0.2mg/L。（3）去掉培养基中的6-BA、添加3g/L AC、去掉培养基中的硝酸铵、使用透气性较好的封口膜、使用2倍钙离子浓度都有利于改善‘种生粉’玻璃化苗的生长情况。2倍铁盐有利于改善‘种生粉’黄化苗的生长状态。无激素的1/2MS（Ca2+加倍）培养基以及WPM培养基有利于壮苗。（4）最适宜‘朱砂判’和‘大富贵’的生根培养基为1/2MS（Ca2+加倍）+IBA1mg/L。（5）‘大富贵’愈伤诱导最佳处理为6-BA 1 mg/L+NAA 0.5 mg/L+2,4-D 0.5 mg/L。’粉玉奴’愈伤诱导最佳的组合分别为,6-BA 1.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L.TDZ 0.5 mg/L+NAA 0.5 mg/L。‘粉玉奴’愈伤增殖最佳处理为,TDZ0.5 mg/L+2,4-D0.5mg/L。添加100mg/L的CH或者100mg/L的LH有利于愈伤组织生长。愈伤增殖采用液体培养效果较好,WPM培养基有利于愈伤组织增殖和生长。2,4-D不利于愈伤组织分化。
二、芍药不定芽的诱导技术（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、芍药不定芽的诱导技术（论文提纲范文）
（1）基于成熟胚和地下芽的芍药离体再生体系建立与优化（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 主要符号对照表 |
| 1 引言 |
| 1.1 芍药组织培养的再生途径 |
| 1.1.1 芍药胚离体培养研究进展 |
| 1.1.2 芍药丛生芽途径研究进展 |
| 1.1.3 芍药体细胞胚发生途径研究进展 |
| 1.2 芍药组织培养常见问题 |
| 1.2.1 褐化问题及其防治 |
| 1.2.2 玻璃化问题及其防治 |
| 1.3 研究目的意义和技术路线 |
| 1.3.1 研究目的意义 |
| 1.3.2 研究内容和技术路线 |
| 2 成熟合子胚离体培养研究 |
| 2.1 材料与方法 |
| 2.1.1 材料 |
| 2.1.2 方法 |
| 2.2 结果与分析 |
| 2.2.1 品种和培养基对成熟合子胚萌发的影响 |
| 2.2.2 不同品种合子胚丛生芽增殖培养比较 |
| 2.2.3 植物生长调节剂对生根的影响 |
| 2.2.4 继代次数对生根的影响 |
| 2.2.5 组培苗移栽情况 |
| 2.3 小结与讨论 |
| 2.3.1 小结 |
| 2.3.2 讨论 |
| 3 芍药地下芽离体诱导丛生芽研究 |
| 3.1 材料与方法 |
| 3.1.1 材料 |
| 3.1.2 方法 |
| 3.2 结果和分析 |
| 3.2.1 消毒时长与消毒方式的比较 |
| 3.2.2 不同植物生长调节剂对增殖培养的影响 |
| 3.2.3 苗级和植物生长调节剂对生根的影响 |
| 3.2.4 组培苗生根细胞学观察 |
| 3.3 小结与讨论 |
| 3.3.1 小结 |
| 3.3.2 讨论 |
| 4 芍药胚性愈伤组织诱导初探 |
| 4.1 材料与方法 |
| 4.1.1 材料 |
| 4.1.2 方法 |
| 4.2 结果与分析 |
| 4.2.1 未成熟合子胚发育时期对体细胞胚诱导的影响 |
| 4.2.2 植物生长调节剂对成熟合子胚体细胞胚的诱导效果 |
| 4.2.3 暗培养时间对子叶和下胚轴愈伤组织诱导的影响 |
| 4.2.4 植物生长调节剂对子叶诱导的影响 |
| 4.2.5 植物生长调节剂对下胚轴诱导的影响 |
| 4.3 小结与讨论 |
| 4.3.1 小结 |
| 4.3.2 讨论 |
| 5 结论 |
| 参考文献 |
| 图版 |
| 个人简介 |
| 导师简介 |
| 获得成果目录清单 |
| 致谢 |
（2）芍药再生体系的建立（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第一章 绪论 |
| 1.1 引言 |
| 1.2 国内外芍药组织培养体系的研究进展 |
| 1.2.1 外植体的选择和取材时间 |
| 1.2.2 芍药组培培养基的选择 |
| 1.2.3 植物生长调节物质 |
| 1.3 国内外芍药组织培养的再生途径 |
| 1.3.1 愈伤组织途径 |
| 1.3.2 丛生芽途径 |
| 1.3.3 体细胞胚途径 |
| 1.4 芍药组织培养中常见问题 |
| 1.4.1 外植体污染 |
| 1.4.2 褐化 |
| 1.4.3 玻璃化 |
| 1.4.4 生根移栽 |
| 1.5 研究目的与意义 |
| 1.6 主要研究内容 |
| 第二章 芍药胚启动离体培养研究 |
| 2.1 材料与方法 |
| 2.1.1 试验材料 |
| 2.1.2 外植体消毒 |
| 2.1.3 培养基和培养条件 |
| 2.1.4 芍药种胚启动培养 |
| 2.1.5 不同浓度6-BA对种胚诱导处理 |
| 2.1.6 芍药胚芽成苗的培养基筛选 |
| 2.1.7 数据处理 |
| 2.2 结果与分析 |
| 2.2.1 芍药胚启动培养基的选择 |
| 2.2.2 不同浓度6-BA对种胚的诱导处理 |
| 2.2.3 KT浓度对种胚成苗率的影响 |
| 2.3 小结与讨论 |
| 2.3.1 小结 |
| 2.3.2 讨论 |
| 第三章 芍药愈伤组织再生途径的研究 |
| 3.1 材料与方法 |
| 3.1.1 试验材料 |
| 3.1.2 子叶节愈伤组织的诱导 |
| 3.1.3 子叶节愈伤组织的增殖 |
| 3.1.4 数据统计 |
| 3.2 结果与分析 |
| 3.2.1 子叶节愈伤组织诱导处理 |
| 3.2.2 2,4-D和与KT对愈伤组织增殖的影响 |
| 3.3 小结与讨论 |
| 3.3.1 小结 |
| 3.3.2 讨论 |
| 第四章 芍药丛生芽再生途径的研究 |
| 4.1 材料与方法 |
| 4.1.1 试验材料 |
| 4.1.2 种胚丛生芽诱导 |
| 4.1.3 芍药子叶节丛生芽诱导 |
| 4.1.4 丛生芽的增殖 |
| 4.1.5 丛生芽的生根 |
| 4.1.6 数据处理 |
| 4.2 结果与分析 |
| 4.2.1 种胚丛生芽的诱导 |
| 4.2.2 不同浓度的6-BA与TDZ对子叶节丛生芽诱导率的影响 |
| 4.2.3 丛生芽增殖分析 |
| 4.2.4 丛生芽生根分析 |
| 4.3 小结与讨论 |
| 4.3.1 小结 |
| 4.3.2 讨论 |
| 第五章 芍药体细胞胚诱导再生的初步研究 |
| 5.1 材料与方法 |
| 5.1.1 试验材料 |
| 5.1.2 胚性愈伤组织的诱导转化 |
| 5.2 结果与分析 |
| 5.2.1 不同处理下的芍药胚性愈伤组织生长状况的比较 |
| 5.2.2 各因素对胚性愈伤组织转化率的影响 |
| 5.2.3 对芍药胚性愈伤组织进行体细胞胚诱导 |
| 5.3 小结与讨论 |
| 5.3.1 小结 |
| 5.3.2 讨论 |
| 第六章 结论 |
| 6.1 芍药最适胚启动培养基和萌发培养基的确定 |
| 6.2 诱导芍药子叶节愈伤组织最适培养基和最适愈伤组织增殖培养基的确定 |
| 6.3 以芍药种胚和子叶节诱导产生丛生芽途径是建立芍药再生体系的最佳途径 |
| 6.4 确定四种植物激素对芍药胚性愈伤组织转化率的影响 |
| 参考文献 |
| 附录 |
| 致谢 |
（3）芍药组织培养研究进展（论文提纲范文）
| 1 芍药生物学特性 |
| 2 外植体的选择和处理 |
| 2.1 外植体的选择 |
| 2.2 外植体的灭菌 |
| 3 培养基 |
| 4 植物生长调节物质 |
| 4.1 植物长调节物质对愈伤组织诱导的影响 |
| 4.2 植物生长调节物质对芽诱导的影响 |
| 4.3 植物生长调节物质对根诱导的影响 |
| 5 组织培养存在的问题 |
| 5.1 褐化及其防治 |
| 5.2 玻璃化及其防治 |
| 6 展望 |
（4）芍药体细胞胚诱导和愈伤组织再分化研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 1 引言 |
| 1.1 体细胞胚的诱导研究 |
| 1.1.1 基本培养基类型和外植体选择 |
| 1.1.2 体细胞胚诱导各阶段的激素处理要求 |
| 1.1.3 培养条件对体细胞胚诱导的影响 |
| 1.1.4 其他影响体细胞胚诱导的添加因子 |
| 1.1.5 体细胞胚发生过程的组织细胞学研究 |
| 1.2 芍药愈伤组织再分化研究 |
| 1.2.1 愈伤组织诱导与增殖研究 |
| 1.2.2 愈伤组织再分化研究 |
| 1.3 花器官愈伤组织诱导研究 |
| 1.3.1 花器官外植体类型对愈伤组织诱导的影响 |
| 1.3.2 花器官愈伤组织的诱导条件要求 |
| 1.3.3 愈伤组织褐化研究 |
| 1.4 研究目的意义和技术路线 |
| 1.4.1 研究目的意义 |
| 1.4.2 研究技术路线 |
| 2 芍药体细胞胚间接诱导途径研究 |
| 2.1 材料与方法 |
| 2.1.1 材料 |
| 2.1.2 方法 |
| 2.2 结果与分析 |
| 2.2.1 外植体和基本培养基类型对愈伤组织诱导的影响 |
| 2.2.2 愈伤组织增殖培养 |
| 2.2.3 胚性愈伤组织诱导研究 |
| 2.2.4 体细胞胚的成熟培养 |
| 2.2.5 体细胞胚起源的组织细胞学、形态学观察 |
| 2.3 小结与讨论 |
| 3 芍药体细胞胚直接发生途径初探 |
| 3.1 材料与方法 |
| 3.1.1 材料 |
| 3.1.2 方法 |
| 3.1.3 培养条件 |
| 3.1.4 数据处理及统计指标 |
| 3.2 结果与分析 |
| 3.2.1 生长调节剂对体细胞胚直接诱导的影响 |
| 3.3 小结与讨论 |
| 4 芍药愈伤组织再分化成苗研究 |
| 4.1 材料与方法 |
| 4.1.1 材料 |
| 4.1.2 方法 |
| 4.2 结果与分析 |
| 4.2.1 地下芽消毒方式的比较 |
| 4.2.2 基本培养基类型筛选 |
| 4.2.3 愈伤组织的增殖培养 |
| 4.2.4 愈伤组织的分化研究 |
| 4.2.5 愈伤组织继代培养 |
| 4.2.6 不定芽成苗培养 |
| 4.2.7 幼苗生根培养 |
| 4.3 小结与讨论 |
| 5 芍药花器官愈伤组织培养研究 |
| 5.1 材料与方法 |
| 5.1.1 材料 |
| 5.1.2 方法 |
| 5.2 结果与分析 |
| 5.2.1 愈伤组织诱导 |
| 5.2.2 愈伤组织增殖 |
| 5.2.3 愈伤组织褐化抑制 |
| 5.2.4 愈伤组织更新培养 |
| 5.3 小结与讨论 |
| 6 结论与讨论 |
| 6.1 结论 |
| 6.2 讨论 |
| 参考文献 |
| 个人简介 |
| 导师简介 |
| 获得成果目录清单 |
| 致谢 |
（5）芍药愈伤组织诱导及不定芽分化的研究（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 1.2.1诱导愈伤组织较优外植体的筛选 |
| 1.2.2诱导愈伤组织较优生长调节剂的筛选 |
| 1.2.3愈伤组织的增殖 |
| 1.2.4愈伤组织分化再生不定芽 |
| 1.2.5芍药茎直接诱导不定芽 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1 不同外植体对诱导愈伤组织的影响 |
| 2.2 不同浓度NAA和2,4-D对诱导愈伤组织的影响 |
| 2.3 不同种类及浓度植物生长调节剂对愈伤组织诱导不定芽的影响 |
| 2.4 芍药茎的不同部位对直接诱导不定芽的影响 |
| 3 结论与讨论 |
（6）波叶红果树愈伤组织诱导及抗逆性研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 1 绪论 |
| 1.1 植物组织培养概述 |
| 1.1.1 植物组织培养的基本原理 |
| 1.1.2 木本观赏植物组织培养研究进展 |
| 1.1.3 愈伤组织诱导及植株再生的研究进展 |
| 1.2 园林植物抗逆性研究 |
| 1.2.1 植物耐荫性的研究概述 |
| 1.2.2 植物耐旱性研究概述 |
| 1.3 波叶红果树研究进展 |
| 1.4 研究目的及内容 |
| 1.4.1 研究目的 |
| 1.4.2 研究内容 |
| 1.4.3 技术路线 |
| 2 波叶红果树愈伤组织诱导研究 |
| 2.1 试验材料及培养条件 |
| 2.2 试验设计 |
| 2.2.1 叶片愈伤组织诱导试验设计 |
| 2.2.2 茎段愈伤组织诱导试验设计 |
| 2.2.3 愈伤组织增殖试验设计 |
| 2.2.4 愈伤组织的分化不定芽试验设计 |
| 2.4 数据统计分析方法 |
| 2.4.1 愈伤组织诱导统计方法 |
| 2.4.2 愈伤组织增殖率统计方法 |
| 2.4.3 愈伤组织分化统计方法 |
| 2.5 结果分析 |
| 2.5.1 叶片愈伤组织诱导结果分析 |
| 2.5.2 茎段愈伤组织研究结果分析 |
| 2.5.3 愈伤组织增殖培养研究结果分析 |
| 2.5.4 愈伤组织不定芽诱导研究 |
| 2.6 小结 |
| 2.6.1 叶片愈伤组织诱导 |
| 2.6.2 茎段愈伤组织诱导 |
| 2.6.3 愈伤组织增殖 |
| 2.6.4 愈伤组织诱导不定芽 |
| 3 波叶红果树抗逆性研究 |
| 3.1 试验材料 |
| 3.2 波叶红果树耐荫性研究方法 |
| 3.3 波叶红果树耐旱性研究方法 |
| 3.4 指标测定方法 |
| 3.5 波叶红果树耐荫性研究结果与分析 |
| 3.5.1 遮荫处理对植物生长的影响 |
| 3.5.2 遮荫处理对叶绿素的影响 |
| 3.5.3 遮荫处理对可溶性蛋白的影响 |
| 3.5.4 遮荫处理对叶绿素荧光参数的影响 |
| 3.5.5 植物耐荫性综合评价 |
| 3.5.6 小结 |
| 3.6 波叶红果树抗旱性研究结果分析 |
| 3.6.1 干旱胁迫对波叶红果树形态的影响 |
| 3.6.2 干旱胁迫对电导率的影响 |
| 3.6.3 干旱胁迫对丙二醛含量的影响 |
| 3.6.4 干旱胁迫对 SOD 的影响 |
| 3.6.5 干旱胁迫对 POD 的影响 |
| 3.6.6 抗旱性各测定指标相关性分析 |
| 3.6.7 小结 |
| 4 结论与讨论 |
| 4.1 结论 |
| 4.2 讨论 |
| 4.2.1 愈伤组织诱导研究 |
| 4.2.2 波叶红果树抗逆性研究 |
| 4.3 展望 |
| 参考文献 |
| 附表 |
| 附图 |
| 个人简介 |
| 致谢 |
（7）芍药组织培养体系的研究（论文提纲范文）
| 中文摘要 |
| Abstract |
| 1 前言 |
| 1.1 芍药属组织培养技术的应用现状 |
| 1.1.1 芍药属无菌体系建立 |
| 1.1.1.1 外植体类型 |
| 1.1.1.2 外植体取材时间 |
| 1.1.1.3 外植体(品)种源 |
| 1.1.1.4 外植体消毒方式 |
| 1.2 芍药属牡丹组织培养体系的研究 |
| 1.2.1 胚培养 |
| 1.2.2 芽培养 |
| 1.2.3 嫩茎培养 |
| 1.2.4 叶片和叶柄培养 |
| 1.2.5 花粉和花药培养 |
| 1.2.6 根培养 |
| 1.3 芍药属芍药组织培养体系的研究 |
| 1.3.1 胚培养 |
| 1.3.2 芽培养 |
| 1.3.2.1 启动培养 |
| 1.3.2.2 增殖培养 |
| 1.3.2.3 生根培养 |
| 1.3.3 愈伤组织体系 |
| 1.3.3.1 愈伤组织诱导以及增殖 |
| 1.3.3.2 芍药愈伤组织脱分化 |
| 1.3.4 体细胞再生体系 |
| 1.4 芍药属植物组织培养中存在问题的研究 |
| 1.4.1 褐化问题 |
| 1.4.1.1 褐化机理的研究 |
| 1.4.1.2 褐化影响因素的研究 |
| 1.4.1.3 抑制褐化措施的研究 |
| 1.4.2 玻璃化问题 |
| 1.4.2.1 玻璃化现象 |
| 1.4.2.2 玻璃化的影响因子的研究 |
| 1.4.3 生根难问题 |
| 1.4.3.1 生根的影响因子的研究 |
| 1.4.3.2 不同的生根模式的研究 |
| 1.4.4 移栽驯化问题 |
| 1.5 研究目的和意义 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 技术路线 |
| 2.2 实验方法 |
| 2.2.1 芍药胚培养 |
| 2.2.1.1 实验材料 |
| 2.2.1.2 外植体的处理 |
| 2.2.1.3 初代培养 |
| 2.2.1.4 生根培养 |
| 2.2.2 芍药鳞芽培养 |
| 2.2.2.1 实验材料 |
| 2.2.2.2 外植体的处理 |
| 2.2.2.3 初代培养 |
| 2.2.2.4 增殖培养 |
| 2.2.2.5 生根培养 |
| 2.2.3 芍药愈伤组织培养 |
| 2.2.3.1 实验材料 |
| 2.2.3.2 外植体的处理 |
| 2.2.3.3 初代培养 |
| 2.2.3.4 继代培养 |
| 2.3 数据统计和分析 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 芍药胚培养 |
| 3.1.1 种皮、胚龄、光照和品种差异对种胚萌发的影响 |
| 3.1.2 不同激素组合对‘紫凤羽’种胚萌发的影响 |
| 3.1.3 不同激素组合对川赤芍种胚萌发的影响 |
| 3.1.4 不同浓度赤霉素对胚苗生根的影响 |
| 3.2 芍药鳞芽培养 |
| 3.2.1 消毒剂、光照和添加剂和对初代培养中褐化问题的影响 |
| 3.2.2 不同激素组合对‘粉玉奴’鳞芽萌动的影响 |
| 3.2.3 不同激素组合对各品种侧芽萌动的影响 |
| 3.2.4 不同激素组合对‘鲁红’丛生芽诱导的影响 |
| 3.2.5 不同激素组合对‘丹凤’鳞芽直接生根的影响 |
| 3.2.6 不同激素组合对组培苗生根的影响 |
| 3.3 愈伤组织培养 |
| 3.3.1 茎段愈伤组织的诱导 |
| 3.3.2 叶片愈伤组织的诱导 |
| 3.3.3 子叶愈伤组织的诱导 |
| 3.3.4 根愈伤组织的诱导 |
| 3.3.5 愈伤组织的继代增殖 |
| 4 讨论 |
| 4.1 鳞芽培养增殖体系中腋芽诱导问题 |
| 4.2 鳞芽培养中组培苗生根率低及解决办法 |
| 4.3 胚培养在芍药育种中的作用 |
| 4.4 鳞芽培养和愈伤增殖培养中的褐化问题 |
| 5 结论 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 攻读学位期间发表论文情况 |
| 图版说明 |
| Plates Introduction |
（8）观赏芍药胚培养及茎段愈伤组织诱导研究（论文提纲范文）
| 中文摘要 |
| ABSTRACT |
| 目录 |
| 引言 |
| 1 芍药组织培养研究现状 |
| 1.1 外植体 |
| 1.2 植物生长调节物质对各外植体培养的影响 |
| 1.2.1 植物生长调节物质对地下芽培养的影响 |
| 1.2.2 植物生长调节物质对胚诱导的影响 |
| 1.2.3 植物生长调节物质对愈伤组织诱导的影响 |
| 1.3 芍药组织培养中常见问题 |
| 1.3.1 外植体污染 |
| 1.3.2 褐化 |
| 1.3.3 玻璃化 |
| 1.3.4 生根移栽 |
| 2. 本研究的目的和意义、研究内容和技术路线 |
| 2.1 研究的目的和意义 |
| 2.2 研究的内容和技术路线 |
| 3. 芍药胚培养的研究 |
| 3.1 材料与方法 |
| 3.1.1 取材 |
| 3.1.2 种子消毒 |
| 3.1.3 胚龄对芍药幼胚离体培养的影响 |
| 3.1.4 成熟胚的离体培养 |
| 3.1.5 培养条件 |
| 3.1.6 数据处理 |
| 3.2 结果与分析 |
| 3.2.1 胚龄对芍药幼胚离体培养的影响 |
| 3.2.2 成熟胚的离体培养 |
| 4. 芍药茎段愈伤组织离体培养 |
| 4.1 材料与方法 |
| 4.1.1 试验取材 |
| 4.1.2 茎段消毒 |
| 4.1.3 愈伤组织的诱导 |
| 4.1.4 愈伤组织的增殖 |
| 4.1.5 愈伤组织的分化 |
| 4.1.6 褐化愈伤组织的再恢复生长 |
| 4.1.7 培养条件 |
| 4.1.8 数据处理 |
| 4.2 结果与分析 |
| 4.2.1 愈伤组织的诱导 |
| 4.2.2 愈伤组织的增殖 |
| 4.2.3 愈伤组织的分化 |
| 4.2.4 褐化愈伤组织的再恢复生长 |
| 5 讨论与结论 |
| 5.1 讨论 |
| 5.1.1 胚培养 |
| 5.1.2 愈伤组织培养 |
| 5.2 结论 |
| 参考文献 |
| 英文缩略词表 |
| 图版 |
| 个人简介 |
| 导师简介 |
| 获得成果目录清单 |
| 致谢 |
（9）芍药组织培养的研究进展（论文提纲范文）
| 1 外植体的选择和处理 |
| 1.1 外植体的选择 |
| 1.2 外植体的灭菌 |
| 2 芍药再生体系的研究 |
| 2.1 器官发生途径 |
| 2.1.1 愈伤组织诱导 |
| 2.1.2 愈伤诱导不定芽 |
| 2.1.3 丛生芽途径 |
| 2.1.4 生根培养 |
| 2.2 体细胞胚状体途径 |
| 3 组织培养存在的问题 |
| 3.1 褐化及其防治 |
| 3.2 玻璃化及其防治 |
| 4 展望 |
（10）芍药品种地下芽诱导及愈伤组织培养研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 目录 |
| 1. 引言 |
| 1.1 芍药的价值和应用 |
| 1.2 芍药属植物组织培养研究进展 |
| 1.2.1 外植体的选择 |
| 1.2.2 培养基 |
| 1.2.3 植物生长调节物质 |
| 1.2.4 其他影响因子 |
| 1.2.5 玻璃化的研究 |
| 1.2.6 褐化的研究 |
| 2. 本研究的目的意义、研究内容以及技术路线 |
| 2.1 研究目的、意义 |
| 2.2 研究内容及技术路线 |
| 3 研究内容与方法 |
| 3.1 地下芽诱导培养 |
| 3.1.1 试验材料 |
| 3.1.2 地下芽启动培养 |
| 3.1.3 试管苗增殖培养 |
| 3.1.4 试管苗玻璃化的改善 |
| 3.1.5 试管苗越夏壮苗研究 |
| 3.1.6 生根培养 |
| 3.1.7 炼苗移栽 |
| 3.2 愈伤组织培养 |
| 3.2.1 试验材料 |
| 3.2.2 愈伤组织诱导 |
| 3.2.3 愈伤组织增殖 |
| 3.2.4 愈伤组织分化 |
| 3.3 培养条件 |
| 3.4 数据处理及统计指标 |
| 4 结果与分析 |
| 4.1 地下芽诱导培养 |
| 4.1.1 启动培养 |
| 4.1.2 增殖培养 |
| 4.1.3 组培苗玻璃化的改善 |
| 4.1.4 组培苗的复壮研究 |
| 4.1.5 根诱导 |
| 4.1.6 炼苗移栽 |
| 4.2 愈伤组织培养 |
| 4.2.1 愈伤组织诱导 |
| 4.2.2 愈伤组织增殖 |
| 4.2.3 愈伤组织分化 |
| 5 结论与讨论 |
| 5.1 结论 |
| 5.2 讨论 |
| 5.2.1 地下芽的启动培养 |
| 5.2.2 增殖培养 |
| 5.2.3 试管苗玻璃化的改善 |
| 5.2.4 试管苗越夏壮苗研究 |
| 5.2.5 生根与移栽 |
| 5.2.6 愈伤组织诱导 |
| 5.2.7 愈伤组织增殖 |
| 5.2.8 愈伤组织分化 |
| 参考文献 |
| 英文缩略词表 |
| 图版 |
| 个人简介 |
| 导师简介 |
| 获得成果目录清单 |
| 致谢 |
四、芍药不定芽的诱导技术（论文参考文献）
- [1]基于成熟胚和地下芽的芍药离体再生体系建立与优化[D]. 张滕. 北京林业大学, 2019(04)
- [2]芍药再生体系的建立[D]. 姚希诺. 沈阳农业大学, 2018(11)
- [3]芍药组织培养研究进展[J]. 常婧. 防护林科技, 2017(08)
- [4]芍药体细胞胚诱导和愈伤组织再分化研究[D]. 魏冬霞. 北京林业大学, 2017(04)
- [5]芍药愈伤组织诱导及不定芽分化的研究[J]. 孙晓梅,程婉,刘萍,周文强,王丹,杨宏光. 沈阳农业大学学报, 2014(01)
- [6]波叶红果树愈伤组织诱导及抗逆性研究[D]. 邢小明. 浙江农林大学, 2013(04)
- [7]芍药组织培养体系的研究[D]. 康冬茹. 山东农业大学, 2013(05)
- [8]观赏芍药胚培养及茎段愈伤组织诱导研究[D]. 沈苗苗. 北京林业大学, 2013(11)
- [9]芍药组织培养的研究进展[J]. 薛银芳,赵大球,周春华,陶俊. 北方园艺, 2012(04)
- [10]芍药品种地下芽诱导及愈伤组织培养研究[D]. 吴红娟. 北京林业大学, 2011(10)